【研究意义】硬骨鱼类的成熟以及排卵和排精主要受到以下丘脑-垂体-性腺轴为中心的内分泌系统和外界环境因子的综合影响［1］。鱼类受到光照和水温等环境因子的刺激后，在下丘脑合成促性腺激素释放激素（gonadotropin-releasing hormone, GnRH），GnRH诱导垂体合成促性腺激素（gonadotropins, GtHs），GtHs中的促黄体激素（luteinizing hormone, LH）能诱导生殖细胞合成成熟诱导激素（maturation-inducing hormone,MIH），最终促进排卵和排精［1］。因此，GnRH和GtHs对诱导鱼类成熟具有重要作用。但是，由于对诱导对象鱼种的GnRH和GtHs的精制较为困难，目前国内外生产上常用人工合成的促黄体激素释放激素类似物（Luteinzing hormone releasing hormone analog, LHRHa）或人绒毛膜促性腺激素（human chorionic gonadotrophin,HCG）作为替代品［2-3］。【前人研究进展】国内有报道运用HCG诱导雌性花鳗鲡（Anguilla marmorata）性腺成熟［4］以及注射LHRH对刀鲚（Coilia nasus）催产效果的影响［5］，而有关石斑鱼催产和人工繁殖的研究仅在赤点石斑鱼（Epinephelus akaara）［6］、鞍带石斑鱼（E.lanceolatus）［7］和蜂巢石斑鱼（E.merra）［8］中有少量报道。此外，也有少量与石斑鱼的胚胎发育、生长和疾病相关的研究报道［9-11］。黑边石斑鱼（E.fasciatus）广泛分布在中国、日本本州中部以南，以及印度洋和太平洋的热带和温带区域，是一种最大规格为50 cm左右的中小型石斑鱼类［12］。作为东亚地区重要的水产资源，其具有很高的市场价值，且被认为高级鱼的代表之一。黑边石斑鱼是一种先雌后雄的海水鱼类，一般在孵化后80～120日龄时性腺分化为雌性，之后在2～3龄时性腺发育成熟并排卵，在3～4龄时性逆转变为雄性［12］。此前，有关黑边石斑鱼的人工繁殖的技术以及孵化后幼鱼的生长在日本东京小笠原水产研究所有少量研究报道［13-14］，为其鱼苗的大规模培育提供了有价值的线索。
【本研究切入点】目前由于黑边石斑鱼的人工繁殖技术在我国尚未完全获得成功，因此其苗种的获得主要依靠天然捕捞，而过度捕捞和市场上的巨大需求导致其产量快速下降。虽然国内在石斑鱼杂交上的人工繁殖技术已经取得巨大突破，其杂交子二代的养殖产量也逐渐提高［15-16］，但尚未见与黑边石斑鱼人工繁殖相关的报道。【拟解决的关键问题】本研究以在日本长崎市东海海域所捕获的成熟黑边石斑鱼为研究对象，使用不同剂量的HCG在繁殖季节对雌鱼进行催产和成熟诱导，记录其成熟后的状态。此外，比较不同处理剂量下黑边石斑鱼排卵孵化的效应时间以及雌雄交配后受精率和孵化率的差异，优化得出雌鱼的最佳HCG催产剂量和效应时间，以期为今后黑边石斑鱼鱼苗在国内大规模的人工繁殖和生产提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料
2018年6—7月在日本长崎市东海海域捕获到活的黑边石斑鱼约40尾，自然水温和光照下暂养在5 t 左右的FRP水槽中。5 d后用细长的导管插入鱼体卵巢内，采集小部分卵巢组织后，在显微镜下确认其卵母细胞的直径。挑选腹部柔软膨大，卵巢轮廓明显，生殖孔红润，且卵母细胞直径为400 µm以上的雌鱼作为试验鱼，总数量18尾。雄鱼的选取标准为出现婚姻色，轻压腹部有乳白色精液流出。为了便于今后识别，在雌鱼背部肌肉内插入微型电子芯片（FishID SST-1,Destron Fering）进行标记。
1.2 试验方法
1.2.1 试验分组 试验设注射相同剂量生理盐水的对照处理和200 IU/kg HCG处理、500 IU/kg HCG处理，各处理随机分配6尾雌鱼。HCG激素溶液参照Nambu［17］的方法配制。测量雌鱼的体长（total length, TL）和体质量（body weight,BW），计算肥满度（condition factor, CF）：CF（%）= TL/BW3×100。各处理中鱼的体长、体质量和肥满度均无显著性差异（表1）。
表1 供试黑边石斑鱼的体长、体质量和肥满度
Table 1 Total length, body weight and condition factor of E.fasciatus in the experiment
处理Treatment雌鱼数量Number of female fish体长Total length（cm）体质量Body weight（g）肥满度Condition factor（g/cm3）对照 Control 6 27.14±2.85 390.13±17.21 14.45±3.21 200 IU/kg HCG 6 29.73±3.61 433.71±14.22 16.76±6.51 500 IU/kg HCG 6 28.01±4.66 405.85±22.91 15.68±1.13
1.2.2 人工催产 7月29日至8月1日，使用1 mL注射器，将HCG注入鱼体侧背部肌肉处后观察试验鱼排卵的变化。注射后，在效应时间内，观察到200 IU/kg HCG处理中的个体出现排卵现象，故停止注射试验；由于没有观察到500 IU/kg HCG处理出现排卵现象，在 8月11—17日，继续对其进行第二次注射试验。对照处理均在同一时间进行注射。
1.2.3 卵母细胞的采样和组织学观察 在注射前、注射时和注射后的各时段，使用卵细胞抽取器在试验鱼的泄殖孔提取少量卵细胞用于检测该时段卵母细胞的发育情况。采集后立即置于波恩试剂中固定24 h后于70%的乙醇中保存用于组织学分析。组织学分析步骤参照Shein等［18］的方法，性腺分期和描述如下：
（1）第三次卵黄球前期（Tertiary yolk1,Ty1）：细胞质中已积累大量卵黄，细胞核周围有油球开始聚集，但核移动还未开始。
（2）第三次卵黄球后期（Tertiary yolk2,Ty2）：细胞质中已积累大量卵黄，细胞核周围有大量油球聚集，核移动即将开始。
（3）核移动期（Migratory nucleolus, Mn）：细胞核移动到动物极一侧。
（4）成熟期（Mature, M）：细胞核破裂，卵黄球和油球融合且分散在细胞质中。
（5）完熟期（Ripe, R）：卵母细胞通过吸水达到透明化的状态。
（6）滤泡闭锁卵母细胞（Atrefic follicle oocyte, Af）：又称退行卵母细胞，滤泡细胞与未发育的卵母细胞结合形成闭锁卵泡，并对卵母细胞的残体和碎片进行吞噬和消化。
1.2.4 鱼成熟度的确认 排卵前，在鱼的卵巢内插入一根细长的导管，采集部分卵巢组织，在显微镜下测量其中15～30粒卵母细胞的直径，直径大于500 µm即可视为其已经完熟并具备排卵的条件。200 IU/kg HCG处理插入导管的时间为注射前24 h，HCG注射时以及注射后30、36、42、48、54、60 h。500 IU/kg HCG处理插入导管的时间除了与前述处理一致外，须在第二次注射后30、36、42、48、54、60、66 h后再次对成熟度进行确认。
1.2.5 人工授精以及受精率和孵化率的计算 对具备排卵条件的个体，挤压腹部采集卵子；对成熟的雄性，挤压腹部采集精子，并采用娄忠玉等［19］的干导法进行人工授精。人工授精后，用海水清洗受精卵，放置在1 L量筒中。静置后分为上浮卵和下沉卵，将上浮卵回收在500 mL的容器中，并将容器放置在维持自然水温的水槽中。人工授精后2.5 h取100粒受精卵转移到培养皿中，在显微镜下观察细胞分裂的情况，计算受精率。此外，根据受精后24 h孵化的鱼苗数量以及死亡卵数，计算孵化率。
1.3 数据处理
利用SPSS 22.0软件对数据进行比较分析。采用Kolmogorov-Smirnov或 Shapiro-Wilk法进行正态分布检测，利用ANOVA检验以及 Tukey’s HSD 法进行差异性比较分析。
2 结果与分析
2.1 不同处理注射HCG前后卵母细胞发育阶段的变化
2.1.1 对照处理与200 IU/kg HCG处理的比较 对黑边石斑鱼性腺进行组织学切片和染色，其各发育阶段分期如图1所示。根据图1判定对照处理和200 IU/kg HCG处理注射前24 h、注射时和注射后30、36、42、48、54、60 h卵母细胞的发育阶段，如表2所示。对照处理中，注射前6尾鱼卵母细胞均处于Ty1阶段，注射后60 h 4尾鱼卵母细胞处于Ty1阶段，2尾鱼处于Ty2阶段。200 IU/kg HCG处理中，注射HCG 24 h前，6尾鱼中有5尾鱼为Ty1阶段；注射HCG时，5尾鱼为Ty2阶段；注射HCG 30、36、42和54 h后1尾鱼观察到核移动卵母细胞（Mn），2尾鱼为Ty2阶段；但注射48 h后2尾鱼出现Mn阶段，1尾鱼为Ty2阶段；注射60 h后1尾鱼出现排卵现象，其余5尾鱼均为Ty2阶段。
2.2.2 对照处理与500 IU/kg HCG处理的比较 根据图1判定，对照处理和500 IU/kg HCG处理注射前 24 h、第一次注射 0、30、36、42、48、54 h后以及第二次注射 0、30、36、42、48、54、60、66 h卵母细胞的发育情况，如表3所示。对照处理在第二次注射后66 h，3尾鱼卵母细胞处于Ty1阶段，3尾鱼处于Ty2阶段。500 IU/kg HCG 处理中注射HCG 24 h前，6尾鱼中只有2尾鱼卵母细胞为Ty1阶段。此外，虽然注射HCG 48—54 h后，所有检测到的尾鱼均为Ty2阶段，但并未观察到成熟的卵母细胞，因此继续进行第二次注射试验。第二次注射后42—60 h，检测到1尾鱼出现Mn阶段；注射后66 h，所有个体均无法排卵且观察到了退行的卵母细胞（Af）。
图1 不同发育阶段雌性黑边石斑鱼性腺的切片
Fig.1 Histological sections of female E.fasciatus at different gonadal development stages
A: 第三次卵黄球前期；B: 第三次卵黄球后期；C: 核移动期；D: 成熟期；E: 完熟期；F: 滤泡闭锁卵母细胞。标尺：100 µm
A: Tertiary yolk 1, Ty1; B: Tertiary yolk 2, Ty2; C: Migratory nucleolus, Mn;D: Mature, M; E: Ripe, R; F: Atrefic follicle oocyte, Af.Scale: 100 μm
表2 对照处理和200 IU/kg HCG处理前后黑边石斑鱼卵母细胞发育阶段的变化
Table 2 Changes of E.Fasciatus in the oocyte development stage under control and 200 IU/kg HCG treatments
注：Ty1: 第三次卵黄球前期；Ty2: 第三次卵黄球后期；Mn: 核移动期；R:完熟期。“-” 代表未检测到。
Note: Ty1: Tertiary yolk 1; Ty2: Tertiary yolk 2; Mn: Migratory nucleolus; R: Ripe.“-” represents undetected.
处理Treatment个体Individual注射前1 d 1 d before injection注射时During injection注射后After injection 30 h 36 h 42 h 48 h 54 h 60 h对照Control Ty1（6） Ty1（6） Ty1（6） Ty1（6） Ty1（6） Ty1（6） Ty1（6） Ty1（4）Ty2（2）200 IU/kg HCG 1 Ty1 Ty2 Mn Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 2-Ty2 - - - - - Ty2 3 Ty1 Ty2 Ty2 Mn Mn Mn Ty2 Ty2 4 Ty1 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Mn Mn R 5 Ty1 Ty2 - - - - - Ty2 6 Ty1 - - - - - - Ty2
2.2 不同处理注射HCG后卵母细胞直径的变化
比较200 IU/kg HCG处理和500 IU/kg HCG处理中6尾鱼HCG注射时和注射60 h后卵母细胞直径的变化。HCG注射时，200 IU/kg HCG处理的4号个体卵母细胞直径仅为477.0 µm，注射60 h后其为排卵阶段，卵母细胞直径增加至624.4 µm；500 IU/kg HCG处理的个体卵母细胞直径无较大差异（表4）。
表3 对照处理和500 IU/kg HCG处理前后黑边石斑鱼卵母细胞发育阶段的变化
Table 3 Changes of E.Fasciatus in the oocyte development stage under control and 500 IU/kg HCG treatments
注：Ty1: 第三次卵黄球前期；Ty2: 第三次卵黄球后期；Mn: 核移动期；Af: 闭锁卵泡。“-” 代表未检测到。
Note: Ty1: Tertiary yolk 1; Ty2: Tertiary yolk 2; Mn: Migratory nucleolus; Af: Atrefic follicle.“-” represents undetected.
处理Treatment个体Individuals注射前1 d 1 d Before injection第一次注射The first injection第二次注射The second injection 0 h 30 h 36 h 42 h 48 h 54 h 0 h 30 h 36 h 42 h 48 h 54 h 60 h 66 h对照Control Ty1（6） Ty1（6）Ty1（6）Ty1（6）T y 1（6）Ty1（6）T y 1（6）Ty1（4）Ty2（2）Ty1（4）Ty2（2）Ty1（4）Ty2（2）Ty1（4）Ty2（2）Ty1（4）Ty2（2）Ty1（4）Ty2（2）Ty1（4）Ty2（2）Ty1（3）Ty2（3）500 IU/kg HCG 1 - Ty1Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 - - - - - Ty1 2 - - Ty1 - Ty1 - - - - - - - - - Af 3 - Ty2Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 - - - - - - - Ty2 4 Ty1 Ty1Ty1 Ty2 Ty2 - Ty2 Ty2 - - Ty2 - - - Af 5 - Ty2Ty2 - - Ty2 - - - - - - - - Af 6 Ty1 Ty2Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Ty2 Mn Mn Mn Mn Ty2
表4 200 IU/kg 和500 IU/kg HCG处理注射时和注射60 h后黑边石斑鱼卵母细胞直径的变化
Table 4 Changes of oocyte diameter of E.Fasciatus during and after 60 h of HCG injection under 200 IU/kg and 500 IU/kg treatments
处理Treatment卵母细胞直径Oocyte diameter（µm）个体Individual 1 2 3 4 5 6 200 IU/kg HCG HCG注射时 538.5 599.1 546.2 477.0 546.9 516.2 HCG注射后60 h 499.7 516.3 516.7 624.4 489.5 521.8 500 IU/kg HCG HCG注射时 435.1 441.2 487.5 446.4 490.2 455.2 HCG注射后60 h 489.1 477.8 471.3 483.1 513.4 423.1
2.3 不同处理注射HCG后受精率和孵化率的差异
200 IU/kg HCG处理获得的总卵数为16 906粒，受精率为68.7%，孵化率为43%；500 IU/kg HCG处理因未观察到排卵现象而无法统计受精率和孵化率。
3 讨论
3.1 诱导时间对排卵的影响
本研究中，对照处理的黑边石斑鱼始终无法成熟，一直停留在第三次卵黄球发育（Ty）阶段，但200 IU/kg HCG处理的卵母细胞在注射前处于Ty阶段，注射48 h后卵巢已发育至核移动期并成熟，60 h后确认排卵。此外，该处理人工受精率为68.7%，孵化率为43%，表明剂量为200 IU/kg的外源HCG 激素可以诱导黑边石斑鱼成熟并排卵。褐石斑鱼（E.bruneus）中，注射HCG 48 h后能够诱导排卵，受精率约为90%，孵化率为60% ～ 80%［20］。七带石斑鱼（E.septemfasciatus）中，注射HCG 42 h后确认排卵，受精率为70% ～ 98%，孵化率为70% ～100%［21］。与上述HCG诱导的时间相比，本研究的诱导时间60 h显得稍长，表明即使同为石斑鱼鱼种，其注射HCG激素后生殖生理变化和反应速度也会有很大不同，从而导致排卵诱导时间的差异。此外，与其他石斑鱼相比，本研究供试黑边石斑鱼的受精率和孵化率均较低，并且在成熟阶段出现了很多退行卵母细胞。因此在今后的研究中，需要再次调整从成熟到排卵的效应时间。
3.2 退行卵形成的主要原因
本试验中，虽然使用HCG诱导促进了部分个体卵母细胞的成熟，但在很多个体的卵巢内出现了退行卵，其形成的可能原因有以下方面：首先，在检测鱼的卵母细胞发育程度时，多次使用导管对鱼的卵巢进行取样。对七带石斑鱼的研究表明，这些行为可能对鱼产生物理性的影响，导致其压力负荷大，发育成熟迟缓和退行［22］，这也可能是导致黑边石斑鱼退行卵形成的原因之一。此外，本研究中的试验鱼是在东海捕获的天然鱼，而不是人工长期饲养的亲鱼，因此其生理和营养状态也存在差异。研究表明，凤尾鱼（Engraulis mordax）处于饥饿下会引起卵巢卵的再吸收而导致其退化［23］。本试验中，采取无投食饲养的方法，可能是导致黑边石斑鱼退行卵形成的另一原因。研究表明，黑边石斑鱼从卵黄蓄积到成熟产卵的时间在6—7月，青铜石斑鱼（E.aeneus）在4—7月［24］，赤点石斑鱼在4—6月［25］，七带石斑鱼在 3—5月［18］，褐石斑鱼在3—5月［26］。这些数据表明，其他石斑鱼从卵黄蓄积到产卵的时间大概持续2个月左右，但黑边石斑鱼仅持续1个月，可能由于其成熟适应期的时间太短而导致其成熟比例降低。此外，6—7月为高水温时期，高水温抑制成熟，因此卵黄蓄积后到成熟产卵的状态难以得到长期维持，也可能导致其无法正常排卵。
4 结论
本研究200 IU/kg HCG处理的6尾黑边石斑鱼在注射HCG 60 h后，最终虽然只有1尾鱼成熟且排卵、受精和孵化，其结果可能具有偶然性。但本研究提供了以下可能性：在今后黑边石斑鱼人工繁殖和孵化的过程中，使用剂量为200 IU/kg外源HCG激素可能诱导其成熟且排卵；但为了提高排卵率、受精率和孵化率，其注射剂量和效应时间还需要进一步调节。此外，为了避免退行卵的形成，应该注意防止水温过高以及频繁使用导管对鱼的卵巢进行破坏性取样。目前，黑边石斑鱼人工繁殖技术的突破在国内仍是一大难题，因此，在今后人工繁殖过程中应综合考虑以上因素。
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