广东农业科学  2023, Vol. 50 Issue (4): 13-21   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2023.04.002.
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文章信息

引用本文
闫晓霞, 朱满山, 王丰, 柳武革, 李金华, 霍兴, 黄永相, 刘迪林. 利用高密度遗传图谱定位水稻耐低氧萌发QTL[J]. 广东农业科学, 2023, 50(4): 13-21.   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2023.04.002
YAN Xiaoxia, ZHU Manshan, WANG Feng, LIU Wuge, LI Jinhua, HUO Xing, HUANG Yongxiang, LIU Dilin. Mapping of QTLs for Tolerance of Hypoxia Germination in Rice with a High-density Genetic Map[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2023, 50(4): 13-21.   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2023.04.002

基金项目

广东省重点领域研发计划项目(2022B0202060002);广东省农业科学院农业优势产业学科团队建设项目(202101TD);广东省乡村振兴战略专项资金种业振兴项目(2022NPY00005,2022NPY00014);国家水稻产业技术体系专项(CARS-01)

作者简介

闫晓霞(1996—),女,在读硕士生,研究方向为水稻分子育种,E-mail:2267855237@qq.com.

通讯作者

刘迪林(1981—),男,博士,副研究员,研究方向为水稻分子育种,E-mail:dilin_liu@163.com.

文章历史

收稿日期:2023-03-09
利用高密度遗传图谱定位水稻耐低氧萌发QTL
闫晓霞1,2 , 朱满山2 , 王丰2 , 柳武革2 , 李金华2 , 霍兴2 , 黄永相1 , 刘迪林2     
1. 广东海洋大学滨海农业学院,广东 湛江 524088;
2. 广东省农业科学院水稻研究所 / 广东省育种新技术重点实验室 / 广东省水稻工程实验室 / 农业农村部华南优质稻遗传育种重点实验室,广东 广州 510640
摘要:【目的】 耐低氧萌发能力是水稻直播适应性的核心性状之一。采用直播型温带粳稻品种Francis和多穗型优质恢复系R998衍生的重组自交系群体开展水稻耐低氧萌发QTL定位研究,旨在为直播稻品种培育提供新的有价值的基因资源,促进直播稻新品种培育和直播稻生产方式的推广。【方法】 以28 ℃淹水10 cm暗培养7 d的水稻胚芽鞘长、芽长和最大根长作为耐低氧萌发能力指标,通过低倍基因组重测序构建含有3 106个bin标记的高密度遗传图谱,采用WinQTL Cart 2.5进行QTL扫描。【结果】 低氧萌发条件下,Francis的胚芽鞘长度和根长显著高于R998,但是两者芽长差异不显著。构建的遗传图谱总图距为3 646.2 cM,其中12号染色体标记数最少,1号染色体标记数最多,分别为174个和389个。遗传图谱的标记平均图距为1.21 cM,各染色体的平均图距范围为0.68 ~1.84 cM,5 cM以上的Gap比例为0.36%。采用复合区间作图法(CIM),共检测到分布于5条染色体上的6个耐低氧萌发相关QTL。其中,控制胚芽鞘长度、芽长和根长的QTL个数分别为3、1、2个。表型贡献率超过10% 的2个QTL是胚芽鞘长度位点qCL9和芽长位点qSL5,二者分别解释群体表型变异的13.39% 和10.78%。qCL9与根长QTL qRL2-1的增效等位基因均来自亲本Francis,其余4个QTL的增效等位基因来自亲本R998。6个QTL中有3个暂未见报道,可能是新的QTL。【结论】 Francis和R998低氧萌发特性存在显著差异,双亲中均含有耐低氧萌发的增效等位基因。qCL9qSL5是分别影响胚芽鞘长和芽长的主效QTL,在直播稻分子育种中具有潜在应用价值。
关键词直播稻    重组自交系(RIL)    淹水萌发    QTL    低氧    胚芽鞘    
Mapping of QTLs for Tolerance of Hypoxia Germination in Rice with a High-density Genetic Map
YAN Xiaoxia1,2 , ZHU Manshan2 , WANG Feng2 , LIU Wuge2 , LI Jinhua2 , HUO Xing2 , HUANG Yongxiang1 , LIU Dilin2     
1. College of Coastal Agricultural Sciences, Guangdong Ocean University, Zhanjiang 524088, China;
2. Rice Research Institute, Guangdong Academy of Agricultural Sciences / Guangdong Key Laboratory of New Technology in Rice Breeding / Guangdong Rice Engineering Laboratory / Key Laboratory of Genetics and Breeding of High Quality Rice in Southern China (Co-construction by Ministry and Province), Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Guangzhou 510640, China
Abstract: 【Objective】 Tolerance to hypoxia germination is one of the key traits for direct-seeding adaptability of rice. The temperate direct-seeding japonica rice variety Francis and multi-panicle indica restorer line R998 were used for QTL mapping of hypoxia germination related traits, aiming to provide new valuable gene resources for developing direct-seeding rice varieties and the promotion of direct-seeding rice production methods. 【Method】 The coleoptile length, shoot length and maximum root length of rice seedlings submerged in 10-cm-depth water in the dark for 7 days at 28℃ were recorded as indicators of hypoxia germination tolerance capacity. A high-density genetic map containing 3 106 bin markers was constructed by low-coverage genome re-sequencing, and QTL scanning was performed with WinQTL Cart 2.5. 【Result】 Under the condition of hypoxia germination, the coleoptile length and root length of Francis are significantly higher than those of R998, but there is no significant difference in shoot length between them. The total genetic distance of the constructed genetic map is 3 646.2 cM, in which the number of markers on chromosome 12 is the least, and that on chromosome 1 is the most, with 174 and 389, respectively. The average marker distance in the genetic map is 1.21 cM, the marker distance of each chromosomes is 0.68 -1.84 cM, and the gaps above 5 cM account for 0.36%. By using composite interval mapping (CIM), six QTLs related to hypoxia germination tolerance are detected on 5 chromosomes. Among them, the number of QTLs controlling coleoptile length, shoot length and root length are 3, 1 and 2, respectively. The coleoptile locus qCL9 and the shoot length locus qSL5 had a phenotypic variance explained (PVE) over 10%, which are 13.39% and 10.78%, respectively. The beneficial allele of qCL9 and the root length locus qRL2-1 come from the parent Francis, while the other four beneficial alleles are provided by the parent R998. Three of the six QTLs have not been reported previously, therefore, they may be novel QTLs. 【Conclusion】 In summary, there is significant difference between Francis and R998 in hypoxia germination, and both parents have beneficial alleles for hypoxia germination tolerance. qCL9 and qSL5 are major effect QTLs controlling hypoxia germination tolerance and have practical value in the molecular breeding of direct-seeding rice.
Key words: direct-seeding rice    recombination inbred line (RIL)    submerged germination    QTL    hypoxia    coleoptile    

【研究意义】水稻(Oryza sativa L.)是我国最重要的粮食作物之一,也是世界上近60% 人口的主食[1-2]。随着城镇化发展和农村劳动力转移,水稻机械化和轻简化生产成为一种趋势。与传统的移栽模式相比,水稻直播栽培省却了育秧和移栽环节,可以节约资源和劳动力投入,实现高效生产[3-5]。水稻直播可分为旱直播、湿直播和淹水直播,其中淹水直播有利于控制杂草,减少鸟害和鼠害,但是对品种的淹水发芽能力要求很高[6-7]。“全苗难”是水稻直播面临的核心问题,也是直播稻产量不高不稳的首要因素[7]。因此,挖掘耐低氧萌发相关基因,培育耐低氧萌发的专用品种成为水稻直播生产的迫切需求。【前人研究进展】目前已定位到一些控制水稻低氧萌发的QTL[5, 8-19]。侯名语等[8]利用81个Kinmaze//DV85重组自交系群体检测到5个低氧发芽相关QTL,表型贡献率为10.5%~19.6%。Jiang等[9]利用USSR5/N22的F2群体,检测到2个低氧发芽力相关QTL,表型贡献率为15.51% 和10.99%。王洋等[10]利用重组自交系群体检测到6个QTL,表型贡献率在5.8%~16.2% 之间。Angaji等[5]利用Khao Hlan On/IR64回交群体,发现5个芽期耐涝性QTL,解释17.9%~33.5% 的表型变异。陈孙禄等[11]以R0380/RP2334回交自交系群体,检测到影响低氧萌发特性的4个QTL,贡献最大的是qGS2.2,贡献率为17.34%。Septiningsih等[12]采用IR42/马占红群体定位到6个QTL,其中7号染色体上的QTL贡献率达31.7%。Baltazar等[13]利用IR64/Nanhi的F2:3群体中,在7号染色体上检测到1个来自Nanhi的厌氧发芽主效QTL qAG7,解释表型变异的22.3%。Yang等[14]用YZX/02428衍生的重组自交系群体,检测到25个与低氧发芽能力相关的QTL。Baltazar等[15]从IR64/Kharsu 80A F 2:3群体中定位到4个与厌氧发芽相关的QTL,解释表型变异的8.1%~12.6%。牛世朋等[16]在Asominori /IR24重组自交系群体中检测到3个与中胚轴伸长相关的QTL,效应值最大的QTL贡献率为11.07%。Ghosal等[17]利用两个分离群体,发现5个淹水存活率相关QTL和4个控制苗高的QTL。张所兵等[18]采用扎西玛/南粳46重组自交系群体,检测到qAG-12,表型贡献率为11.24%。Liu等[19]利用93-11背景的片段导入系,发现两个与胚芽鞘伸长有关的QTL qAGP1qAGP3,贡献率均达到15%。通过全基因组关联分析,也发现一些和水稻低氧萌发性显著关联的位点[20-23]。例如,孙凯等[20]采用200份水稻种质进行关联分析,分别鉴定到8个活力指数相关QTL和15个与胚芽鞘相关的QTL。此外,克隆了4个低氧萌发基因[24-27]。其中,OsTPP7是首个通过正向遗传学途径分离的耐低氧萌发基因,通过调控海藻糖6-磷酸的代谢,增强水稻厌氧萌发的耐受性[24]OsCBL10是淹水条件下低氧信号通路的负调控因子,其启动子序列差异决定了基因效应,在耐淹型水稻品种中OsCBL10的表达水平极低[25]。利用全基因组关联分析鉴定到控制缺氧萌发的基因CLSY1,可能通过甲基化途径参与低氧萌发性的调控[26]。最近,从杂草稻中克隆到控制低氧萌发出苗的关键基因OsGF14h,编码一个14-3-3蛋白,导入栽培稻后可以显著提高直播萌发率和成苗率[27]。【本研究切入点】目前尽管在水稻耐低氧萌发基因挖掘方面取得一些进展,但仍存在一些突出问题。一是田间表型受环境影响大,导致基因克隆难度大;二是很多研究采用了SSR和RFLP等传统低通量标记,遗传图谱的标记密度不高,导致QTL定位区间较大。因此,适合育种利用的基因仍然十分缺乏,亟需挖掘更多新的芽期耐低氧基因/QTL。【拟解决的关键问题】针对这些问题,本研究利用外引直播稻品种Francis和我国南方稻区大面积应用的骨干恢复系R998创制RIL群体,构建高密度遗传图谱,并在室内可控环境下开展水稻低氧萌发相关QTL定位,为芽期耐低氧基因克隆和分子育种提供支撑。

1 材料与方法 1.1 试验材料

以直播型温带粳稻品种Francis为母本,多穗型优质恢复系R998为父本进行温汤杂交,从F2代起采用单粒传法构建含有214个家系的RIL群体。

1.2 试验方法

2022年4—12月在广东广州市天河区广东省农业科学院水稻研究所开展试验。从重组自交系群体各家系选取20粒健康饱满的种子,自来水冲洗3次,放入体积为460 mL的透明塑料杯中,杯中加入10 cm深的灭菌水,杯口盖上培养皿,在28 ℃、相对湿度75% 的黑暗条件下淹水7 d,保持淹水深度不变,以此来模拟低氧萌发环境。淹水处理7 d后,将萌发的种子取出,观察萌发和生长情况,用直尺测量幼苗的胚芽鞘长(coleoptile length,CL)、芽长(shoot length,SL)和最大根长(root length,RL)。

1.3 遗传图谱构建

采用CTAB法提取Francis、R998及214个家系的基因组DNA,检测合格的DNA样品经过酶切、加测序接头、纯化、PCR扩增等步骤完成文库制备。构建好的文库通过Illumina HiSeq测序平台进行测序,委托华大基因完成。测序数据根据亲本间SNP过滤后得到SNP位点。采用窗口滑动的方法,每15个SNP为1个窗口,最终获得3 106个bin标记, 利用MSTMap软件构建重组自交系群体的高密度遗传连锁图谱[28]

1.4 水稻低氧萌发QTL定位

整合表型数据和基因型数据,采用WinQTL Cart 2.5进行QTL扫描[29],检测低氧萌发性状相关QTL,LOD阈值设定为2.5。QTL的命名遵循McCouch命名原则[30]

2 结果与分析 2.1 双亲及群体低氧萌发表型分析

在淹水条件下发芽7 d后,对水稻亲本Francis和R998的低氧萌发性进行调查,测量其胚芽鞘长、芽长和最大根长。结果发现,Francis的胚芽鞘长、芽长和最大根长的均值分别为3.03、3.40、0.74 cm, R998的胚芽鞘长、芽长和最大根长的均值分别为1.99、2.73、0.57 cm。Francis的胚芽鞘长度和最大根长显著高于R998 (P < 0.05,图 1表 1),但两者芽长差异不显著。

A:Francis和R998低氧萌发1~7 d生长动态;B:RIL群体低氧萌发胚芽鞘长度分布;C:RIL群体低氧萌发芽长分布;D:RIL群体低氧萌发最大根长分布;E:Francis和R998低氧萌发的胚芽鞘长、芽长和最大根长比较
* 和** 分别表示在P<0.05和P<0.01水平的显著差异
A: Growth dynamics of Francis and R998 seedlings under hypoxia germination from day 1 to day 7; B: Distribution of coleoptile length of RIL population under hypoxia germination; C: Distribution of shoot length of RIL population under hypoxia germination; D: Distribution of root length of RIL population under hypoxia germination; E: Comparison of coleoptile length, shoot length and root length between Francis and R998
* and ** indicate significant differences at the levels of P < 0.05 and P < 0.01, respectively
图 1 Francis/R998 RIL群体低氧萌发特性的表型分布 Fig. 1 Phenotypic distribution of the RIL population of Francis/R998 under hypoxia germination

表 1 Francis/R998 RIL群体低氧萌发表型统计 Table 1 Statistics of phenotype among the RIL population of Francis/R998 under hypoxia germination

在重组自交系群体中,各家系芽长和最大根长均值分别为3.90 cm和0.62 cm,中位数分别为3.86 cm和0.66 cm, 胚芽鞘长的平均值为2.97 cm,中位数为3.31 cm,最大值为7.00 cm, 最小为0.85 cm, 变异系数为0.28。群体中有多个家系的胚芽鞘长度表现出超亲现象。因此,Francis/R998的RIL群体各家系间在低氧萌发性上具有较大的表型变异。从表型频率分布看,3个表型在群体内均呈现出正态分布,除了最大根长的峰度为1.46,其余的峰度和偏度绝对值都小于1,适合进行QTL作图(图 1 B~D)。

2.2 水稻低氧萌发的标记连锁图谱构建

利用低倍基因组重测序数据,构建了水稻Francis/R998重组自交系群体的高密度遗传图谱。根据窗口滑动的方法,得到每个家系的基因型并生成bin图,最后上图的bin标记总数为3 106个,其中12号染色体标记数最少,1号染色体标记数最多,分别为174个和389个;总图距3 646.2 cM,4号染色体遗传图距最长,而9号染色体最短,分别为399.6 cM和220.8 cM (图 2)。整张遗传图谱的标记平均图距为1.21 cM,平均图距范围是0.68~1.84 cM,大于5 cM的Gap比例为0.36%。因此,构建的遗传图谱标记密度均匀,图谱质量较好,完全满足QTL定位的要求。

染色体左侧为物理位置(Mb),右侧是对应的bin标记名称 Physical positions (Mb) were labeled on the left of each chromosome, and bin marker names were indicated on the right side 图 2 Francis/R998 RIL群体耐低氧萌发性QTL的染色体位置 Fig. 2 Chromosome locations of hypoxia germination-related QTLs in the RIL population of Francis/R998

2.3 水稻低氧萌发QTL定位

利用软件WinQTL Cart 2.5的ICM法对水稻低氧萌发表型进行QTL扫描。结果表明,在淹水条件下共检测到6个与低氧萌发相关的QTL (表 2图 2)。控制胚芽鞘长的QTL有3个(图 3),其中qCL1位于1号染色体标记区间bin364~bin369,LOD值为2.62,贡献率为5.05%,加性效应-0.43;qCL9位于9号染色体标记区间bin79~bin83,LOD值为6.67,贡献率为13.39%,加性效应0.69;qCL12位于12号染色体标记区间bin41~bin45,LOD值为2.76,贡献率为4.93%,加性效应-0.43。qCL9的表型贡献率大于10%,是一个主效位点。qCL1qCL12的加性效应是负值,表明增效等位基因均来自R998;qCL9加性效应为正值,表明增效等位基因来自Francis。

表 2 Francis/R998 RIL群体中检测到的耐低氧萌发性QTL Table 2 QTLs for hypoxia germination tolerance detected in the RIL population of Francis/R998

图 3 Francis/R998 RIL群体低氧萌发胚芽鞘长度的QTL扫描峰图 Fig. 3 QTLs peak of coleoptile length under hypoxia germination in the RIL population of Francis/R998

控制芽长的QTL只有1个,即位于5号染色体上的qSL5,LOD值为5.00,标记区间位于染色体上bin169~bin173,贡献率为10.78%,加性效应为-0.85。该位点的表型贡献率大于10%,也是主效位点,加性效应分析表明,增效等位基因来自R998。

控制根长的QTL有2个,均位于2号染色体上,命名为qRL2-1qRL2-2,LOD值分别为3.31和2.84,位于2号染色体标记区间bin261~bin267和bin202~bin210,贡献率分别为6.42%、6.47%,加性效应分别为-0.20、0.19。值得注意的是,这两个QTL的效应值相当、作用方向相反,qRL2-1的加性效应是负值,表明增效等位基因来自R998,qRL2-2的加性效应是正值,增效等位基因来自Francis。

2.4 低氧萌发QTL中候选基因筛选

从定位到的QTL中,我们选取效应值最大的两个位点qCL9qSL5作进一步分析,在目标区间上下游500 kb范围内筛选可能的候选基因。其中胚芽鞘长位点qCL9位于9号染色体12.63~13.04 Mb范围,距该区间上游约400 kb的12.25 Mb处存在1个已克隆基因OsTPP7,该基因编码1个海藻糖-6-磷酸磷酸酶,也是首个通过图位克隆分离到的低氧萌发条件下控制胚芽鞘伸长的基因[24]。因此,OsTPP7可能是胚芽鞘长相关位点qCL9的候选基因。此外,从已有的转录组数据中,在芽长位点qSL5区间发现对淹水胁迫具有响应的9个基因,其中3个下调,6个上调(表 3)。

表 3 qSL5位点的可能候选基因 Table 3 Potential candidate genes for the locus qSL5

从功能相关性看,最紧密的是LOC_Os05g39580LOC_Os05g39990LOC_Os05g39580可能为ABA受体,主要影响种子萌发和幼苗早期生长,LOC_Os05g39990则编码一个扩展蛋白,过表达植株会促进胚芽鞘和中胚轴的伸长[33, 36]。其余7个基因分别编码锌铁转运蛋白、氧化还原酶、VHS/GAT结构域蛋白、转氨酶、NFD4蛋白、OVATE家族蛋白和LTP家族蛋白(表 3)。

3 讨论

随着农村劳动力转移和农业科技进步,水稻生产方式正在发生重大变迁,机械化和轻简化生产势在必行,其中淹水直播是水稻轻简化生产的重要发展方向,不但具有省工、省时和高效等优势,还具有防草防鸟防鼠的功效,是南方地区理想的直播生产方式。在直播稻生产中,淹水带来的低氧条件下,水稻种子萌发和出苗受到影响,显著降低水稻的成苗率。低氧萌发成苗能力强的专用品种缺乏,成为影响直播稻发展的瓶颈。因此,加快淹水直播专用品种的培育,亟需对水稻芽期耐低氧萌发性基因和QTL进行挖掘,为分子育种提供更多的有利基因资源。在芽期耐低氧萌发QTL研究中,材料的选择十分关键。本研究采用的RIL群体材料衍生自亲本Francis和R998,其中Francis是国外的直播型温带粳稻品种,R998是我国南方稻区大面积应用的优质多穗型恢复系,二者具有丰富的遗传差异,且在低氧萌发方面有显著差异,是开展耐低氧萌发QTL研究的理想材料。

前人研究表明,水稻种子在低氧条件下萌发时,根和叶的生长受到抑制,但是胚芽鞘可以快速伸长到达有氧环境,为根和叶的生长提供足够氧气。一般认为,耐低氧萌发的水稻品种胚芽鞘伸长能力比不耐低氧萌发的品种强。在耐低氧萌发性的衡量指标方面,以往的研究普遍采用低氧条件下萌发的芽长[8]、胚芽鞘长[10]、缺氧反应指数[37]、淹水成苗率[38]等。本研究则采用淹水暗培养7 d的芽长、胚芽鞘长和最大根长作为衡量指标。侯名语等[8]从籼粳分化角度比较,认为水稻品种的低氧发芽力存在籼粳差异,粳稻的低氧发芽力一般比籼稻强。类似地,Rauf等[39]比较了来自6个水稻亚群的185份水稻材料,发现低氧萌发条件下粳稻的发芽率和胚芽鞘长度整体优于其他亚群,温带粳稻的平均胚芽鞘长最大。本研究中采用的温带粳稻Francis胚芽鞘伸长能力显著好于籼稻R998。因此,从粳稻中筛选耐低氧萌发的种质,值得引起重视。

前人多项研究表明,水稻低氧萌发性是多基因控制的数量性状[8-15]。本研究采用高密度遗传图谱,定位到6个低氧萌发相关的QTL。其中有3个QTL与前人结果处于相同或相近位置,如9号染色体上的胚芽鞘长度QTL qCL9(物理位置:12.63~13.04 Mb),与已克隆的OsTPP7位置临近(12.25 Mb处)[24]。尽管二者是否由同一基因控制还需确认,但是这类在不同研究中重复鉴定、效应稳定的QTL,在耐低氧遗传机制和育种应用中均有较大价值。

2号染色体上控制根长的QTL qRL2-1(物理位置:30.38~30.63 Mb),与Septiningsih等[12]检测到的淹水发芽QTL qAG2临近(29.9 Mb处);2号染色体上控制根长的QTL qRL2-2,位于25.78 ~26.09 Mb区间,与控制淹水成苗率的qSES2存在区间重叠(24.04~26.5 Mb)[31],它们可能是相同的QTL。

此外,本研究定位到的QTL有3个暂未见报道。胚芽鞘长度QTL qCL1qCL12,分别位于1号染色体41.55~42.02 Mb和12号染色体36.06~37.09 Mb区间;芽长QTL qSL5,位于5号染色体23.18~23.59 Mb区间,这3个位点附近暂未见低氧萌发相关QTL的报道,可能是控制低氧萌发性的新位点。在qSL5区间筛选到9个可能的候选基因,其中LOC_Os05g39580LOC_ Os05g39990可能性最大。LOC_Os05g39580是潜在的ABA受体;LOC_Os05g39990编码一个扩展蛋白,过表达植株会促进胚芽鞘和中胚轴的伸长[33, 36]

不同水稻品种的低氧萌发能力不同。从品种选育角度看,耐低氧萌发QTL位点的发掘对于耐低氧萌发水稻品种的定向培育具有重要意义。一般认为,贡献率在10% 以上的主效QTL具有应用价值。前人克隆的OsTPP7已经用于直播稻品种的改良,定向导入栽培稻品种后,耐低氧萌发能力有不同程度的提升[40]。本研究定位的QTL中效应值最大的是胚芽鞘位点qCL9和芽长位点qSL5,效应值均在10% 以上,增效等位基因分别来自Francis和R998,在育种中可以利用分子标记进行前景选择将二者进行聚合,创制耐低氧萌发能力显著提升的新种质。此外,良好的低温发芽力也是直播品种所需的关键性状[41-42],本研究下一步也将采用该群体进行低温发芽性状的遗传分析。

4 结论

淹水直播是水稻生产的重要发展方向。然而,低氧萌发性强的专用品种缺乏,成为影响直播稻发展的瓶颈。加快淹水直播专用品种的培育,亟需对水稻耐低氧萌发性基因和QTL进行挖掘。本研究以Francis和R998衍生的重组自交系群体为材料,检测到6个低氧萌发相关的QTL,其中3个可能是新位点。两个主效QTL qCL9qSL5贡献率均大于10%,在分子育种中具有应用潜力,胚芽鞘长度QTL qCL9的增效等位基因来自外来种质Francis,芽长QTL qSL5的增效等位基因来自骨干恢复系R998,在分子育种中可将这些位点通过杂交、回交和分子标记辅助选择导入新品系中,提高水稻品种的耐低氧萌发能力。在qSL5区间筛选到9个候选基因,可进一步鉴定这些候选基因的表达和功能,为解析水稻淹水直播机制奠定基础,为培育直播稻新品种提供新的基因资源。

参考文献(References):
[1]
MUTHAY YA S, SUGIMOTO J D, MONTGOMERY S, MABERLY G F. An overview of global rice production, supply, trade, and consumption[J]. Annals of the New York Academy of Sciences, 2014, 1324(1): 7-14. DOI:10.1111/nyas.12540
[2]
朱德峰, 张玉屏, 陈惠哲, 镜向, 张义凯. 中国水稻高产栽培技术创新与实践[J]. 中国农业科学, 2015, 48(17): 3404-3414. DOI:10.3864/j.issn.0578-1752.2015.17.008
ZHU D F, ZHANG Y P, CHEN H Z, JING X, ZHANG Y K. Innovation and practice of high-yield rice cultivation technology in china[J]. Scientia Agricultura Sinica, 2015, 48(17): 3404-3414. DOI:10.3864/j.issn.0578-1752.2015.17.008
[3]
FAROOQ M, SIDDIQUE K H M, REHMAN H, AZIZ T, LEE D-J, WAHID A. Rice direct seeding: Experiences, challenges and opportunities[J]. Soil and Tillage Research, 2011, 111(2): 87-98. DOI:10.1016/j.still.2010.10.008
[4]
景德道, 余波, 钱华飞, 盛生兰, 林添资, 胡春明, 张继本, 刁立平, 龚红兵, 周义文, 李闯. 直播稻品种的筛选与育种策略[J]. 江苏农业科学, 2008(4): 24-27. DOI:10.15889/j.issn.1002-1302.2008.04.035
JING D D, YU B, QIAN H F, SHENG S L, LIN T Z, HU C M, ZHANG J B, DIAO L P, GONG H B, ZHOU Y W, LI C. Screening and breeding strategy of direct seeding rice varieties[J]. Jiangsu Agricultural Sciences, 2008(4): 24-27. DOI:10.15889/j.issn.1002-1302.2008.04.035
[5]
ANGAJI S A, SEPTININGSIH E M, MACKILL D J. QTLs associated with tolerance of flooding during germination in rice (Oryza sativa L.)[J]. Euphytica, 2010, 172: 159-168. DOI:10.1007/s10681-009-0014-5
[6]
刘利成, 李小湘, 黎用朝, 潘孝武, 闵军, 刘三雄, 刘文强, 胡敏, 段永红, 余亚莹, 张海清. 水稻种子耐厌氧萌发全基因组关联分析[J]. 植物资源遗传学报, 2021, 22(6): 1644-1650. DOI:10.13430/j.cnki.jpgr.20210425002
LIU L C, LI X X, LI Y C, PAN X W, MI N J, LIU S X, LIU W Q, HU M, DUAN Y H, YU Y Y, ZHANG H Q. Genome wide association study of anaerobic germination tolerance in seeds of rice accessions[J]. Journal of Plant Genetic Resources, 2021, 22(6): 1644-1650. DOI:10.13430/j.cnki.jpgr.20210425002
[7]
闫晓霞, 王丰, 柳武革, 廖亦龙, 朱满山, 付崇允, 霍兴, 刘迪林. 水稻直播适应性的遗传基础与育种策略[J]. 广东农业科学, 2022, 49(1): 1-13. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2022.01.001
YAN X X, WANG F, LIU W G, LIAO Y L, ZHU M S, FU C Y, HUO X, LIU D L. Genetic basis of direct seeding adaptability in rice and its breeding strategy[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2022, 49(1): 1-13. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2022.01.001
[8]
侯名语, 江玲, 王春明, 万建民. 水稻种子低氧发芽力的QTL定位和上位性分析[J]. 中国水稻科学, 2004, 18(6): 483-488. DOI:10.16819/j.1001-7216.2004.06.002
HOU M Y, JIANG L, WANG C M, WAN J M. Quantitative trait loci and epistatic analysis for seed anoxia germinability in rice (Oryza sativa)[J]. Chinese Journal of Rice Science, 2004, 18(6): 483-488. DOI:10.16819/j.1001-7216.2004.06.002
[9]
JIANG L, LIU S, HOU M, TANG J, CHEN L, ZHAI H, WAN J. Analysis of QTLs for seed low temperature germinability and anoxia germinability in rice (Oryza sativa L.)[J]. Field Crops Research, 2006, 98: 68-75. DOI:10.1016/j.fcr.2005.12.015
[10]
王洋, 郭媛, 洪德林. 水稻幼苗耐缺氧能力的QTL分析[J]. 中国水稻科学, 2010, 24(1): 18-24. DOI:10.3969/j.issn.1001-7216.2010.01.04
WANG Y, GUO Y, HONG D L. QTL analysis of the anoxic tolerance at the seedling stage in rice[J]. Chinese Journal of Rice Science, 2010, 24(1): 18-24. DOI:10.3969/j.issn.1001-7216.2010.01.04
[11]
陈孙禄, 王俊敏, 潘佑找, 马健阳, 张建辉, 张红生. 水稻萌发耐淹性的遗传分析[J]. 植物学报, 2012, 47(1): 28-35. DOI:10.3724/sp.J.1259.2012.00028
CHEN S L, WANG J M, PAN Y Z, MA J Y, ZHANG J H, ZHANG H S. Genetic analysis of seed germinability under submergence in rice[J]. Chinese Bulletin of Botany, 2012, 47(1): 28-35. DOI:10.3724/sp.J.1259.2012.00028
[12]
SEPTININGSIH E M, IGNACIO J C, SENDON P M, SANCHEZ D L, ISMAIL A M, MACKILL D J. QTL mapping and confirmation for tolerance of anaerobic conditions during germination derived from the rice landrace Ma-Zhan Red[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2013, 126: 1357-1366. DOI:10.1007/s00122-013-2057-1
[13]
BALTAZAR M D, IGNACIO J C I, THOMSON M J, ISMAIL A M, MENDIORO M S, SEPTININGSIH E M. QTL mapping for tolerance of anaerobic germination from IR64 and the aus landrace Nanhi using SNP genotyping[J]. Euphytica, 2014, 197: 251-260. DOI:10.1007/s10681-014-1064-x
[14]
YANG J, SUN K, LI D, LUO L, LIU Y, HUANG M, YANG G, LIU H, WANG H, CHEN Z, GUO T. Identification of stable QTLs and candidate genes involved in anaerobic germination tolerance in rice via high-density genetic mapping and RNA-Seq[J]. BMC Genomics, 2019, 20: 355. DOI:10.1186/s12864-019-5741-y
[15]
BALTAZAR M D, IGNACIO J C J, THOMSON M J, ISMAIL A M, MENDIORO M S, SEPTININGSIH E M. QTL mapping for tolerance to anaerobic germination in rice from IR64 and the aus landrace Kharsu 80A[J]. Breeding Science, 2019, 69(2): 227-233. DOI:10.1270/jsbbs.18159
[16]
牛世朋, 吕育松, 邬亚文, 魏祥进, 圣忠华, 焦桂爱, 胡时开, 唐绍清. 控制水稻中胚轴伸长的QTL定位[J]. 中国稻米, 2019, 25(6): 55-59. DOI:10.3969/j.issn.1006-8082.2019.06.014
NIU S P, LYU Y S, WU Y W, WEI X J, SHENG Z H, JIAO G A, HU S K, TANG S Q. QTLs mapping for mesocotyl length in rice[J]. China Rice, 2019, 25(6): 55-59. DOI:10.3969/j.issn.1006-8082.2019.06.014
[17]
GHOSAL S, CASAL C, QUILLOY F A, SEPTININGSIH E M, MENDIORO M S, DIXIT S. Deciphering genetics underlying stable anaerobic germination in rice: phenotyping, QTL identification, and interaction analysis[J]. Rice, 2019, 12(1): 50. DOI:10.1186/s12284-019-0305-y
[18]
张所兵, 张云辉, 陈海元, 林静, 汪迎节, 朱晓妹, 宋春凤, 方先文. 利用重组自交系定位水稻种子低氧发芽力QTL[J]. 华北农学报, 2020, 35(6): 31-35. DOI:10.7668/hbnxb.20191206
ZHANG S B, ZHANG Y H, CHEN H Y, LIN J, WANG Y J, ZHU X M, SONG C F, FANG X W. Identification of QTL involved in anaerobic germination tolerance by RIL population in rice[J]. Acta Agriculturae Boreali-Sinica, 2020, 35(6): 31-35. DOI:10.7668/hbnxb.20191206
[19]
LIU L, LI X, LIU S, MIN J, LIU W, PAN X, FANG B, HU M, LIU Z, LI Y, ZHANG H. Identification of QTLs associated with the anaerobic germination potential using a set of Oryza nivara introgression lines[J]. Genes Genomics, 2021, 43: 399-406. DOI:10.1007/s13258-021-01063-6
[20]
孙凯, 李冬秀, 杨靖, 董骥驰, 严贤诚, 罗立新, 刘永柱, 肖武名, 王慧, 陈志强, 郭涛. 水稻耐淹成苗率相关性状全基因组的关联分析[J]. 中国农业科学, 2019, 52(3): 385-398. DOI:10.3864/j.issn.0578-1752.2019.03.001
SUN K, LI D X, YANG J, DONG J C, YAN X C, LUO L X, LIU Y Z, XIAO W M, WANG H, CHEN Z Q, GUO T. Genome-wide association analysis for rice submergence seedling rate[J]. Scientia Agricultura Sinica, 2019, 52(3): 385-398. DOI:10.3864/j.issn.0578-1752.2019.03.001
[21]
NGHI K N, TONDELLI A, VALÈ G, TAGLIANI A, MARÈ C, PERATA P, PUCCIARIELLO C. Dissection of coleoptile elongation in japonica rice under submergence through integrated genome-wide association mapping and transcriptional analyses[J]. Plant Cell Environment, 2019, 42: 1832-1846. DOI:10.1111/pce.13540
[22]
陈振挺, 冯芳君, 严明, 范佩清, 马孝松, 吴金红, 梅捍卫. 水稻自然变异群体淹水发芽相关特性鉴定[J]. 上海农业学报, 2020, 36(5): 1-6. DOI:10.15955/j.issn1000-3924.2020.05.01
CHEN Z T, FENG F J, YAN M, FAN P Q, MA X S, WU J H, MEI HAN W. Identification of characteristics related to submergence germination of rice natural variation population[J]. Acta Agriculturae Shanghai, 2020, 36(5): 1-6. DOI:10.15955/j.issn1000-3924.2020.05.01
[23]
SU L, YANG J, LI D, PENG Z, XIA A, YANG M, LUO L, HUANG C, WANG J, WANG H, CHEN Z, GUO T. Dynamic genome-wide association analysis and identification of candidate genes involved in anaerobic germination tolerance in rice[J]. Rice, 2021, 14(1): 1. DOI:10.1186/s12284-020-00444-x
[24]
KRETZSCHMAR T, PELAYO M A F, TRIJATMIKO K R, GABUNADA L F M, ALAM R, JIMENEZ R, MENDIORO M S, SLAMET-LOEDIN I H, SREENIVASULU N, BAILEY-SERRES J, ISMAIL A M, MACKILL D J, SEPTININGSIH E M. A trehalose-6-phosphate phosphatase enhances anaerobic germination tolerance in rice[J]. Nature Plants, 2015, 1: 15124. DOI:10.1038/nplants.2015.124
[25]
YE N H, WANG F Z, SHI L, CHEN M X, CAO Y Y, ZHU F Y, WU Y Z, XIE L J, LIU T Y, SU Z Z, XIAO S, ZHANG H, YANG J, GU H Y, HOU X X, HU Q J, YI H J, ZHU C X, ZHANG J, LIU Y G. Natural variation in the promoter of rice calcineurin B-like protein10 (OsCBL10) affects flooding tolerance during seed germination among rice subspecies[J]. The Plant Journal, 2018, 94: 612-625. DOI:10.1111/tpj.13881
[26]
CASTANO-DUQUE L, GHOSAL S, QUILLOY F A, MITCHELL-OLDS T, DIXIT S. An epigenetic pathway in rice connects genetic variation to anaerobic germination and seedling establishment[J]. Plant Physiology, 2021, 186: 1042-1059. DOI:10.1093/plphys/kiab100
[27]
SUN J, ZHANG G, CUI Z. Regain flood adaptation in rice through a 14-3-3 protein OsGF14h[J]. Nature Communication, 2022, 13: 5664. DOI:10.1038/s41467-022-33320-x
[28]
WU Y, BHAT P, CLOSE T, LONARDI S. Efficient and accurate construction of genetic linkage maps from the minimum spanning tree of a graph[J]. PLoS Genetics, 2008, 4(10): e1000212. DOI:10.1371/journal.pgen.1000212
[29]
HAICHAO J, YUTAO F, LEI Q, GUANJUN G, QINGLU Z, YUQING H. Identification of blast resistance QTLs based on two advanced backcross populations in rice[J]. Rice, 2020, 13(1): 31. DOI:10.1186/s12284-020-00392-6
[30]
MCCOUCH S R. Gene nomenclature system for rice[J]. Rice, 2008, 1(1): 72-84. DOI:10.1007/s12284-008-9004-9
[31]
IWATA N, SHINADA H, KIUCHI H, SATO T. Mapping of QTLs controlling seedling establishment using a direct seeding method in rice[J]. Breeding Science, 2010, 60(4): 353-360. DOI:10.1270/jsbbs.60.353
[32]
TAN L, QU M, ZHU Y, PENG C, WANG J, GAO D, CHEN C. ZINC TRANSPORTER5 and ZINC TRANSPORTER9 function synergistically in zinc/cadmium uptake[J]. Plant Physiology, 2020, 183(3): 1235-1249. DOI:10.1104/pp.19.01569
[33]
TIAN X, WANG Z, LI X, LV T, LIU H, WANG L, NIU H, BU Q. Characterization and functional analysis of pyrabactin resistance-like abscisic acid receptor family in rice[J]. Rice, 2015, 8(1): 28. DOI:10.1186/s12284-015-0061-6
[34]
KOTHARI K S, DANSANA P K, GIRI J, TYAGI A K. Rice stress associated protein 1 (OsSAP1) interacts with aminotransferase (OsAMTR1) and pathogenesis-related 1a protein (OsSCP) and regulates abiotic stress responses[J]. Frontiers in Plant Science, 2016, 7: 1057. DOI:10.3389/fpls.2016.01057
[35]
CHEN B M, DU X. Overexpression of ovate family protein 22 confers multiple morphological changes and represses gibberellin and brassinosteroid signalings in transgenic rice[J]. Plant Science, 2021, 304: 110734. DOI:10.1016/j.plantsci.2020.110734
[36]
CHOI D, LEE Y, CHO H, KENDE H. Regulation of expansion gene expression affects growth and development in transgenic rice plants[J]. Plant Cell, 2003, 15(6): 1386-1398. DOI:10.1105/tpc.011965
[37]
张晓丽, 陶伟, 王强, 陈雷, 郭辉, 梁天锋, 高国庆, 唐茂艳. 基于早稻直播的水稻品种耐低温和低氧能力评价[J]. 南方农业学报, 2019, 50(12): 2680-2687. DOI:10.3969/j.issn.2095-1191.2019.12.08
ZHANG X L, TAO W, WANG Q, CHEN L, GUO H, LIANG T F, GAO G Q, TANG M Y. Evaluation of tolerance to low temperature and anoxia of rice varieties based on direct seeding of early rice (Oryza sativa L.)[J]. Journal of Southern Agriculture, 2019, 50(12): 2680-2687. DOI:10.3969/j.issn.2095-1191.2019.12.08
[38]
方志强, 陆展华, 王石光, 刘维, 卢东柏, 王晓飞, 巫浩翔, 陈浩, 何秀英. 不同种植模式对水稻生长的影响及适宜直播品种的筛选[J]. 广东农业科学, 2022, 49(6): 1-10. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2022.06.001
FANG Z Q, LU Z H, WANG S G, LIU W, LU D B, WANG X F, WU H X, CHEN H, HE X Y. Effects of different planting patterns on rice growth and selection of rice varieties suitable for direct seeding[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2022, 49(6): 1-10. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2022.06.001
[39]
RAUF M, CHOI Y M, LEE S, LEE M C, OH S, HYUN D Y. Evaluation of anaerobic germinability in various rice subpopulations: identifying genotypes suitable for direct-seeded rice cultivation[J]. Euphytica, 2019, 215(2): 19. DOI:10.1007/s10681-019-2341-5
[40]
MONDAL S, KHAN M, ENTILA F, DIXIT S, CRUZ P, PANNA A, PITTENDRIGH B, SEPTININGSIH E, ISMAIL A. Responses of AG1 and AG2 QTL introgression lines and seed pre-treatment on growth and physiological processes during anaerobic germination of rice under flooding[J]. Scientific Reports, 2020, 7: 1-16. DOI: 10(1):10214.10.1038/s41598-020-67240-x.
[41]
马雅美, 张少红, 赵均良. 水稻直播相关性状遗传分析及分子机制研究进展[J]. 广东农业科学, 2021, 48(10): 13-22. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2021.10.002
MA Y M, ZHANG S H, ZHAO J L. Research progress in genetic analysis and molecular mechanisms of rice direct-seeding related traits[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2021, 48(10): 13-22. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2021.10.002
[42]
周炼, 陈洛, 吴伟, 杨梯丰, 张少红, 赵均良. 一个锌指结合蛋白编码基因调控水稻种子萌发[J]. 广东农业科学, 2022, 49(9): 1-9. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2022.09.001
ZHOU L, CHEN L, WU W, YANG T F, ZHANG S H, ZHAO J L. Seed germination in rice regulated by a zinc-finger binding protein encoding gene[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2022, 49(9): 1-9. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2022.09.001

(责任编辑     马春敏)