广东农业科学  2024, Vol. 51 Issue (4): 101-114   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2024.04.009.
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文章信息

引用本文
刘思嘉, 许多, 刘佳伟, 程龙, 章月琴, 杨荣超. 番茄组蛋白修饰基因家族鉴定及表达分析[J]. 广东农业科学, 2024, 51(4): 101-114.   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2024.04.009
LIU Sijia, XU Duo, LIU Jiawei, CHENG Long, ZHANG Yueqin, YANG Rongchao. Identification and Expression Analysis of Histone Modification Gene Family in Tomato[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2024, 51(4): 101-114.   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2024.04.009

基金项目

国家自然科学基金(32370359)

作者简介

刘思嘉(1998—),女,在读硕士生,研究方向为热带园艺植物,E-mail: 1379174809@qq.com.

通讯作者

杨荣超(1979—),博士,讲师,研究方向为热带园艺植物,E-mail: yangrc2021@163.com.

文章历史

收稿日期:2023-12-05
番茄组蛋白修饰基因家族鉴定及表达分析
刘思嘉 , 许多 , 刘佳伟 , 程龙 , 章月琴 , 杨荣超     
广东海洋大学滨海农业学院,广东 湛江 524088
摘要:【目的】 植物组蛋白的功能修饰包括乙酰化修饰和甲基化修饰,在植物生长发育及逆境响应的过程中发挥着重要作用。番茄组蛋白修饰(Histone modification,HM)基因家族的生物学功能及分子机制尚不清楚,该文旨在进一步明确番茄HM基因的生物学功能,为其分子机制研究及番茄遗传改良奠定基础。【方法】 基于番茄基因组数据库鉴定番茄HM成员,利用生物信息学的方法系统分析其HM基因家族成员的系统进化、基因结构、染色体定位,通过在线转录组数据分析番茄HM基因家族时空表达模式。【结果】 共鉴定到148个番茄HM基因,其中32个编码组蛋白乙酰转移酶(Histone acetyltransferase,HAT),11个编码组蛋白去乙酰化酶(Histone deacetylase,HDAC),50个编码组蛋白甲基转移酶(Histone methyltransferase,HMT),55个编码组蛋白去甲基化酶(Histone demethylase,HDM)。148个基因不均匀地分布在12条染色体上,其中3号染色体上分布最多、有21个基因,12号染色体上分布最少、有4个基因。基因结构特征分析表明,番茄HM基因之间外显子的差异较大,最多可达34个、最少仅有1个。蛋白质结构域分析结果显示,Solyc07g064130、Solyc11g005670、Solyc10g006480仅含有Ubl结构域,Solyc07g062100、Solyc10g077110和Solyc03g083310仅含有Zn-finger结构域,另有10个成员含有Bromo结构域、48个成员含有SET结构域,其他成员还包含PLN02529、PRMT5等结构域。此外,番茄HM与拟南芥和水稻中的同源蛋白关系均较远,且与水稻相比,番茄HM序列与拟南芥同源蛋白序列亲缘关系较近。根据聚类分析,将番茄HM分成HAT、HDAC、HMT、HDM 4个家族。组织表达分析表明,HAT家族在发芽后30 d的花(F30)、开花后10 d的果实(10 DPA)、花(fr)、根(rr)、未成熟的果实(Plgfr)中高表达;HDAC家族在发芽后30 d的花(F30)和未成熟果实(Plgfr)中高表达;HMT家族在发芽后30 d的花(F30)、在全株50% 的花开放时的花(F45)、花蕾(br)、3 cm果实(3fr)、未成熟5 cm果实(PB+5fr)中高表达;HDM家族在发芽后30 d的花(F30)、在全株50% 的花开放时的花(F45)、花蕾(br)、花(fr)、根(rr)、3 cm果实(3fr)、未成熟5 cm果实(PB+5fr)中高表达。【结论】 不同番茄HM的基因结构差异较大,包含多种功能结构域。番茄HM与拟南芥、水稻HM的同源关系较远,且在植物不同生长发育阶段及不同器官组织中均有一定的表达,表明该类基因可能参与番茄多种生长发育过程。
关键词番茄    组蛋白修饰基因家族    基因结构    蛋白结构    系统进化    表达模式    
Identification and Expression Analysis of Histone Modification Gene Family in Tomato
LIU Sijia , XU Duo , LIU Jiawei , CHENG Long , ZHANG Yueqin , YANG Rongchao     
College of Coastal Agricultural Sciences, Guangdong Ocean University, Zhanjiang 524088, China
Abstract: 【Objective】 Functional modifications of plant histones, including acetylation modification and methylation modification, play important roles in plant growth and development and in response to adversity. The biological functions and molecular mechanisms of the histone modification (HM) gene family in tomato are still unclear. The present study aims to further clarify the biological functions of the HM genes in tomato, and to lay a foundation for the study of their molecular mechanisms and genetic improvement of tomato. 【Method】 We identified tomato HM members based on the tomato genome database, systematically analyzed the phylogeny, gene structure, and chromosomal localization of its HM gene family members with bioinformatics methods, and analyzed the spatio-temporal expression patterns of the tomato HM gene family through an online transcriptome database. 【Result】 A total of 148 tomato HM genes were identified in this study, including 32 encoded histone acetyltransferase (HAT), 11 encoded histone deacetylase (HDAC), 50 encoded histone methyltransferase (HMT), and 55 encoded histone demethylase (HDM). The 148 genes were unevenly distributed on different chromosomes, with the highest number of genes on chromosome 3 (21 genes) and the lowest number of genes on chromosome 12 (4 genes). Gene structure characterization showed that the exons varied greatly among tomato HM genes, with the most exons amounting to 34 and the least to only 1. Protein structure domain analysis showed that Solyc07g064130, Solyc11g005670 and Solyc10g006480 contained only the Ubl structure domains, Solyc07g062100, Solyc10g077110 and Solyc03g083310 contained only the Zn-finger structure domain, another 10 proteins contain the Bromo structure domain, 48 proteins contained only the SET structure domain, and other proteins contained other structure domains such as PLN02529 and PRMT5. In addition, the homologous proteins of tomato HM were distantly related to those of both Arabidopsis and Oryza sativa, and the protein sequences of the tomato HM were more closely related to those of the Arabidopsis thaliana than to those of Oryza sativa. Based on the clustering analysis, the tomato HM members were divided into four families, HAT, HDAC, HMT, and HDM. Tissue expression analysis showed that the HAT family was highly expressed in flowers at 30 d after germination (F30), fruits at 10 d post-anthesis (10DPA), flowers (fr), roots (rr), and immature fruits (Plgfr); the HDAC family was highly expressed in flowers (F30) and immature fruits (Plgfr); the HMT family was highly expressed in flowers (F30), when 50% of the whole plant flowers open (F45), flower buds (br), 3 cm fruits (3fr), and immature 5 cm fruits (PB+5fr); the HDM family was highly expressed in flowers (F30), when 50% of the whole plant flowers open (F45), flower buds (br), flowers (fr), roots (rr), 3 cm fruits (3fr), and immature 5 cm fruits (PB+5fr). 【Conclusion】 The gene structures of different tomato HM vary greatly and contain multiple functional structural domains. The homologous members of tomato HM are distant from those of Arabidopsis thaliana and Oryza sativa, and tomato HM are expressed in different growth and developmental stages of plants and in different organ tissues, suggesting that this class of genes may be involved in a variety of growth and developmental processes in tomato.
Key words: Lycopersicum esculentum    histone modification gene family    gene structure    protein structure    phylogeny    expression pattern    

【研究意义】我国是番茄(Lycopersicum esculentum)种植面积最大、产量最高的国家[1]。番茄因其果实酸甜可口、风味独特,且富含多种营养物质,深受人们喜爱[2]。贾俊婷等[3]指出,组蛋白修饰基因家族在植物生长发育中起着至关重要的作用。但目前,研究人员对重要园艺作物番茄中的组蛋白修饰(Histone modification,HM)基因家族却知之甚少。通过全面分析番茄HM的基因结构、功能蛋白结构域、与拟南芥和水稻同源基因的进化关系等生物特征,为深入研究番茄HM基因的功能提供理论参考,并为加快优良番茄品种分子设计育种奠定基础。【前人研究进展】大量研究表明,HM可以通过改变染色质结构、调节细胞分裂、分化、迁移等方式来影响植物的形态和生理变化[4-8]。组蛋白修饰过程由4种不同的HM基因家族成员调控,包括组蛋白甲基转移酶(Histone methyltransferase,HMT)、组蛋白去甲基化酶(Histone demethylase,HDM)、组蛋白乙酰化酶(Histone acetylase,HAT)和组蛋白去乙酰化酶(Histone deacetylase,HDAC)。4个HM基因家族均由不同数量的亚家族组成,且具有不同的结构域。HMT包含SDG(Set domain group)和PRMT(Protein arginine methyltransferases)亚家族;HDM包含HDMA(SWIRM、C-terminal domain)和JMJ(JmjC结构域蛋白)亚家族;HAT包含HAG(GCN5-、ELP3-和HAT1-样组蛋白乙酰化酶结构域)、HAM(MOZ-YBF2结构域)、HAC(p300/creb结合蛋白结构域)和HAF(TATA-结合蛋白相关因子-TAF250)亚家族;HDAC包含HDA(RPD3/HDA1superfamily)、SRT(Silent information regulator 2)和HDT(HD2 family)亚家族[9-12]。已有研究表明,不同植物中含有不同数量的HM基因成员,如苹果、香橙、荔枝、油棕榈中分别含有198、136、87、109个HM[13-17]。【本研究切入点】番茄是重要的园艺作物,同时也是一种模式植物,主要用于果实发育等研究。虽然番茄中已见HDAC家族基因的分离鉴定[18],但关于番茄HM全基因家族的研究尚未见报道。【拟解决的关键问题】本研究拟通过番茄全基因组分析,鉴定番茄中该基因家族的成员,并详细分析各成员的染色体定位、基因结构和蛋白保守基序特征,揭示各基因家族成员与拟南芥(Arabidopsis thaliana)和水稻(Oryza sativa)同源基因的亲缘关系,同时明确各基因的组织器官表达特征,为深入研究番茄HM各基因的功能提供依据。

1 材料与方法 1.1 HM家族成员的鉴定

番茄基因组数据来源于Sol Genomics Network(https://solgenomics.net/)网站。通过已知的拟南芥、水稻基因组及其HM基因信息,使用E value < 1e-10的BLSATP程序对番茄基因组进行查询。从Pfam数据库(https://pfam.xfam.org/)下载HM家族HMM模型文件(附件S1),使用HMMER软件进一步确定假定序列。

1.2 番茄HM基因结构分析

根据番茄基因组注释信息,通过GSDS(http://gsds.cbi.pku.edu.cn/)网站在线分析并对番茄HM基因结构进行可视化绘图。

1.3 番茄HM蛋白系统进化树构建

从拟南芥基因数据网站(https://www.arabidopsis.org/index.jsp)获取拟南芥HM蛋白序列,从水稻基因组数据库(http://rice.uga.edu/index.shtml)获取水稻HM蛋白序列,利用茄科数据库(http://palmxplore.mpob.gov.my/palmxplore/)查找下载番茄HM蛋白序列。使用ClustalW Muscle默认参数对番茄、拟南芥、水稻的HM蛋白序列进行多序列比对,使用MEGA 7.0软件[19-20]以最大似然法分别构建番茄、拟南芥、水稻三者HMT、HDM、HAT和HDAC成员的系统发育树,bootstrap值为1 000。

1.4 番茄HM基因染色体定位

根据番茄全基因组注释数据,获取番茄各染色体长度及HM基因在染色体上的位置,并利用TBtools软件对其进行可视化绘图[21]

1.5 番茄HM基因在不同组织中的表达分析

从Tomexpress(http://tomexpress.toulouse.inra.fr/)获取HM基因的RNA-seq数据,采用Tbtools绘制热图,研究HM基因的时空表达模式。

2 结果与分析 2.1 番茄HM基因家族的鉴定

在番茄中共鉴定到148个组蛋白修饰基因(HM),其中编码组蛋白甲基转移酶(HMT)的基因50个、编码组蛋白去甲基化酶(HDM)的基因55个、编码组蛋白乙酰化酶(HAT)和组蛋白去乙酰化酶(HDAC)的基因分别有32和11个。番茄HM基因家族成员根据其蛋白结构域被分为11个亚家族(SDG、PRMT、HDMA、JMJ、HAG、HAM、HAC、HAF、HDA、SRT和HDA)。HMT家族包含SDG和PRMT;HDM家族包含HDMA和JMJs;HAT家族包括HAGs、HAMs、HACs和HAF;HDAC家族包括SRT、HDA和HDA亚家族。番茄HM基因家族成员的所有基因ID见附件S2。

2.2 番茄HM基因家族成员染色体定位分析

对148个番茄HM成员的染色体定位进行分析,结果(图 1)显示,番茄HM基因家族成员不均匀地分布在12条染色体上。其中,3号染色体上分布最多、有21个基因,12号染色体分布最少、有4个基因。

图 1 番茄中HM基因的染色体定位 Fig. 1 Chromosomal localization of HM genes in tomato

2.3 番茄HM蛋白结构预测与基因结构分析

HM家族成员蛋白结构预测结果(图 2B图 3B图 4B图 5B)表明,Solyc07g064130、Solyc11g005670、Solyc10g006480仅存在Ubl结构域;Solyc07g062100、Solyc10g077110和Solyc03g083310仅含有Zn-finger结构域;Solyc03g110910包含ELP3结构域、N端自由基SAM结构域和C端GNAT乙酰转移酶结构域,其中ELP3结构域是RNA聚合酶Ⅱ全酶的组成部分。Solyc05g005640、Solyc07g062660、Solyc01g103570、Solyc01g106280、Solyc07g064700、Solyc02g068560、Solyc02g071510、Solyc02g093880、Solyc09g055660、Solyc06g051210等10个成员含有Bromo结构域。Solyc04g009430和Solyc07g065550含有SIRT结构域。Solyc05g024100、Solyc07g020990、Solyc05g024040、Solyc11g030760、Solyc11g030780、Solyc05g055590、Solyc05g016300、Solyc05g051150、Solyc05g051153、Solyc05g024070、Solyc05g040010、Solyc11g008320和Solyc05g051157成员含有PLN03000结构域。Solyc10g049410、Solyc05g006250、Solyc07g063500、Solyc07g063450蛋白存在PLN02529结构域,该结构域与赖氨酸特异性组蛋白去甲基化有关。负责组蛋白甲基化的酶类有3种,其中含赖氨酸特异性SET结构域的组蛋白甲基化酶负责组蛋白H的4位(H3K4)、9位(H3K9)、20位、27位(H3K27)赖氨酸的甲基化。此外,Solyc04g081100存在PLN02976结构域,Solyc08g005970具有PRMT5结构域,其他49个基因均存在SET结构域。

A:系统进化树;B:蛋白结构域;C:基因结构 A: Phylogenetic tree; B: Protein structure domain; C: Gene structure 图 2 番茄HAT家族的蛋白结构域和基因结构分析 Fig. 2 Analysis of protein structure domain and gene structure of the HAT family in tomato

A:系统进化树;B:蛋白结构域;C:基因结构 A: Phylogenetic tree; B: Protein structure domain; C: Gene structure 图 3 番茄HDAC家族的蛋白结构域和基因结构分析 Fig. 3 Analysis of protein structure domain and gene structure of the HDAC family in tomato

A:系统进化树;B:蛋白结构域;C:基因结构 A: Phylogenetic tree; B: Protein structure domain; C: Gene structure 图 4 番茄HDM家族的蛋白结构域和基因结构分析 Fig. 4 Analysis of protein structure domain and gene structure of the HDM family in tomato

A:系统进化树;B:蛋白结构域;C:基因结构 A: Phylogenetic tree; B: Protein structure domain; C: Gene structure 图 5 番茄HMT家族的蛋白结构域和基因结构分析 Fig. 5 Analysis of protein structure domain and gene structure of the HMT family in tomato

HM基因家族结构特征分析结果(图 2C)表明,HM基因家族成员中外显子数量不同。在HAT家族中,Solyc07g064130Solyc02g068580Solyc05g006180均只有1个外显子,而Solyc07g006820基因却有21个外显子。在HDM家族中,Solyc04g028580Solyc05g0024100Solyc05g024040Solyc12g008850Solyc05g018880Solyc07g039310Solyc11g030760Solyc05g051150Solyc05g051153Solyc10g04910均只有1个外显子,而Solyc08g081000基因外显子多达34个。在HDAC家族中,Solyc06g074080基因仅有3个外显子,而 Solyc03g119730基因有17个外显子。在HMT家族中,Solyc09g090030Solyc06g007760Solyc08g044590Solyc08g044550Solyc03g093760Solyc03g093710Solyc06g060960Solyc08g077940Solyc09g090810Solyc10g077070Solyc03g112690均仅有1个外显子,Solyc09g098260基因外显子数量多达25个(图 2C图 3C图 4C图 5C)。

2.4 番茄HM家族成员系统发育分析

图 6图 7可知,番茄中HDAC、HDM家族的蛋白序列与拟南芥和水稻中的HM蛋白同源关系均较远。但整体来看,与水稻相比,番茄HM蛋白序列与拟南芥HM蛋白序列在进化关系上更为相近。

图 6 番茄、拟南芥和水稻HAT(A)、HDAC(B)家族成员的系统发育关系 Fig. 6 Phylogenetic relationship of HAT (A) and HDAC (B) members in tomato, Arabidopsis thaliana and Oryza sativa

图 7 番茄、拟南芥和水稻HMT(A)、HDM(B)成员的系统发育关系 Fig. 7 Phylogenetic relationship of HMT (A) and HDM (B) members in tomato, Arabidopsis thaliana and Oryza sativa

2.5 番茄HM基因家族的共线性分析

为了解番茄基因组中HM基因家族的扩张情况,本研究利用Circos生成一个重复区块的基因复制事件图(图 8)。通过比较12条番茄染色体上的148个番茄HM基因,共鉴定出13对HM基因存在连锁。HDM家族所含数量最多(6对),分别为Solyc02g081390Solyc03g031880Solyc03g097090Solyc08g076390Solyc03g097090Solyc08g005240Solyc05g055590Solyc11g008320Solyc07g039310Solyc12g008850Solyc07g043590Solyc12g006370,其中Solyc03g097090为重复基因;HMT家族共有5对,分别为Solyc01g095890Solyc03g083410Solyc01g006220Solyc12g100290Solyc06g060960Solyc08g077940Solyc06g083760Solyc09g072890Solyc09g072890Solyc09g090630HAT家族共有1对,Solyc07g064130Solyc10g006480HDAC家族共有1对,Solyc03g112410Solyc06g071680。配对的HM重复基因均位于番茄基因组的不同染色体块中(图 8)、如3号染色体,以上结果暗示番茄HM基因家族扩张可能是通过这些重复区域发生。

图 8 番茄HM基因复制事件及染色体间关系 Fig. 8 HM gene replication events and interchromosomal relationships in tomato

2.6 番茄HM基因家族的组织表达分析

为分析148个番茄HM基因家族成员在不同组织的表达水平,本研究利用公开的转录组数据分析番茄不同发育组织中HM的转录丰度,结果如图 9图 10所示,番茄HM基因成员在3个不同品种(‘Micro-Tom’‘pimp’‘Heinz’)不同发育阶段的组织中差异表达。

‘Micro Tom’品种-芽期:发芽后30 d(R30:根,S30:茎,L30:叶,F30:花);开花期:全株50% 的花开放时(R45:根,S45:茎,L4:叶,F45:花);破色期:第1个果实达到破色期时(R85:根,S85:茎,L85:叶);10 DPA、20 DPA:开花后10、20 d的果实;IMG、MG:未成熟、成熟绿色果实;Br、Br3、Br7、Br10、Br15:果实破色第1、3、7、10、15 d.‘Heinz’品种-br:花蕾;fr:花;lr:叶;rr:根;1fr:1 cm果实;2fr:2 cm果实;3fr:3 cm果实;Mfr:成熟果实;Bfr1、Bfr2:绿熟期果实;B+10fr1、B+10fr:果实破色第10 d.‘Pimp’品种-Plgfr:未成熟果实;PB+5fr:未成熟果实生长到5cm时;Plf:叶 'Micro Tom' variety-Bud stage: 30 days after germination (R30: Root, S30: Stem, L30: Leaf, F30: Flower); Anthesis: When 50 % of the whole plant flowers open (R45: Root, S45: Stem, L4: Leaf, F45: Flower); Breaker: When the first fruit reaches color break (R85: Root, S85: Stem, L85: Leaf); 10 DPA, 20 DPA: Fruits at ten, twenty days post-anthesis; IMG, MG: Immature, Mature green fruit; Br, Br3, Br7, Br10, Br15: Fruit color breaking day 1, 3, 7, 10, 15. 'Heinz' variety-br: Buds; fr: Flower; lr: Leaf; rr: Root; 1fr: 1 cm fruit; 2fr: 2 cm fruit; 3fr: 3 cm fruit; MFr: Mature fruit; Bfr1, Bfr2: Green ripe fruit; B+10fr1, B+10fr: Fruit color breaking day 10. 'Pimp' variety-Plgfr: Immature fruit; PB+5fr: When immature fruit grows to 5cm fruit; Plf: Leaf 图 9 番茄HDAC(A、B)与HAT(C、D)家族基因在不同组织不同发育时期的表达分析 Fig. 9 Expression analysis of tomato HDAC (A, B) and HAT (C, D) family genes in different tissues at different developmental stages

‘Micro Tom’品种-芽期:发芽后30 d(R30:根,S30:茎,L30:叶,F30:花);开花期:全株50% 的花开放时(R45:根,S45:茎,L4:叶,F45:花);破色期:第1个果实达到破色期时(R85:根,S85:茎,L85:叶);10 DPA、20 DPA:开花后10、20 d的果实;IMG、MG:未成熟、成熟绿色果实;Br、Br3、Br7、Br10、Br15:果实破色第1、3、7、10、15 d.‘Heinz’品种-br:花蕾;fr:花;lr:叶;rr:根;1fr:1 cm果实;2fr:2 cm果实;3fr:3 cm果实;Mfr:成熟果实;Bfr1、Bfr2:绿熟期果实;B+10fr1、B+10fr:果实破色第10 d.‘Pimp’品种-Plgfr:未成熟果实;PB+5fr:未成熟果实生长到5cm时;Plf:叶 'Micro Tom' variety-Bud stage: 30 days after germination (R30: Root, S30: Stem, L30: Leaf, F30: Flower); Anthesis: When 50 % of the whole plant flowers open (R45: Root, S45: Stem, L4: Leaf, F45: Flower); Breaker: When the first fruit reaches color break (R85: Root, S85: Stem, L85: Leaf); 10 DPA, 20 DPA: Fruits at ten, twenty days post-anthesis; IMG, MG: Immature, Mature green fruit; Br, Br3, Br7, Br10, Br15: Fruit color breaking day 1, 3, 7, 10, 15. 'Heinz' variety-br: Buds; fr: Flower; lr: Leaf; rr: Root; 1fr: 1 cm fruit; 2fr: 2 cm fruit; 3fr: 3 cm fruit; MFr: Mature fruit; Bfr1, Bfr2: Green ripe fruit; B+10fr1, B+10fr: Fruit color breaking day 10. 'Pimp' variety-Plgfr: Immature fruit; PB+5fr: When immature fruit grows to 5cm fruit; Plf: Leaf 图 10 番茄HDM(A、B)与HMT(C、D)家族基因在不同组织不同发育时期的表达分析 Fig. 10 Expression analysis of tomato HDM (A, B) and HMT (C, D) family genes in different tissues at different developmental stages

HDAC家族成员(图 9A图 9B),如‘Micro-Tom’品种中,Solyc03g112410基因在发芽后30 d的花(F30)中高表达;‘Pimp’品种中,Solyc03g112410Solyc06g074080Solyc08g065350Solyc11g067020等4个基因在未成熟果实(Plgfr)中高表达。

HAT家族成员(图 9C图 9D),如‘Micro-Tom’品种中,Solyc09g055660Solyc05g006180在发芽后30 d的花(F30)中高表达,Solyc04g082530基因在开花后10 d的果实中(10 DPA)高表达;‘Heinz’品种中,Solyc09g055660基因在花(fr)中高表达,Solyc10g006480Solyc06g051210Solyc01g008120基因在根(rr)中高表达,Solyc04g058190基因在未成熟果实(Plgfr)中高表达。

HDM成员(图 10A图 10B),如‘Micro-Tom’品种中,Solyc08g005240Solyc03g031880Solyc11g030780等3个基因在发芽后30 d的花(F30)中高表达,Solyc03g097090Solyc07g063500Solyc10g047350Solyc10g049410Solyc06g060610基因在全株50% 的花开放时的花(F45)中高表达,Solyc12g006370Solyc01g087590等基因在开花后10 d的果实中(10 DPA)高表达;‘Heinz’品种中,Solyc02g069740Solyc07g063500Solyc03g031880Solyc11g030780等4个基因在花蕾(br)中高表达,Solyc03g097090基因在花(fr)中高表达,Solyc05g018880基因在根(rr)中高表达,Solyc05g055590基因在3 cm果实(3fr)中高表达,Solyc09g091490基因在未成熟果实生长到5 cm时的叶片中(Plr)中高表达。

HMT成员(图 10C图 10D),如‘Micro-Tom’品种中,Solyc07g008500Solyc03g112690基因在发芽后30 d的花(F30)中高表达,Solyc07g008580基因在全株50% 的花开放时的花(F45)中高表达;‘Heinz’品种中,Solyc07g008580Solyc03g112690基因在花蕾(br)中高表达,Solyc01g095890基因在3 cm果实(3fr)中高表达;‘Pimp’品种中,Solyc07g006060基因在未成熟5 cm果实(PB+5fr)中高表达。

3 讨论

组蛋白修饰酶(HM)通过修饰调节组蛋白的状态,在植物不同的生长和发育过程中发挥重要作用。目前,已有研究在拟南芥、水稻、苹果等多种植物中分析了组蛋白修饰酶基因家族,但番茄中尚未对该家族基因进行鉴定,且其具体生物学功能也不清楚。

本研究共鉴定出148个番茄HM成员,分别为32个组蛋白乙酰转移酶(HAT)、11个组蛋白去乙酰化酶(HDAC)、50个组蛋白甲基转移酶(HMT)和55个组蛋白去甲基化酶(HDM),并分析了它们在染色体上的位置、基因结构、保守基序、基因复制事件及系统发育关系,揭示了该类基因与拟南芥和水稻同源基因亲缘关系的远近。同时,检测分析了全部基因在不同组织的表达模式。番茄HM基因家族成员数量与已鉴定物种成员的数量相近。例如,在油棕中共鉴定到109个HM基因家族成员,其中HMT 48个,HDM 27个[15],同时发现其基因组上存在13种组蛋白乙酰化酶亚基(简称H型)与21种组蛋白去羧化酶亚基(简称C型)。Peng等[17]从荔枝基因组上共鉴定出87个HM家族成员,其中HAT 6个、HDAC 11个、HMT 48个和HDM 22个。这些结果表明,在不同植物中该类基因家族成员的数量存在很大差异,进一步体现了植物在进化过程中的多样性。

利用已知的转录组数据库,本研究分析了番茄HM基因家族成员在不同组织的表达水平。HDAC家族中,Solyc01g009120在叶组织中高表达,且有报道指出该基因定位于叶绿体[22],暗示该基因可能在番茄叶片叶绿体形成和发育调控中起着重要作用。Solyc06g071680在果实发育的未成熟阶段高表达,并随着果实发育其表达量下降,表明该基因可能在番茄果实发育调控中起作用,这与已报道的结果[23]一致。水稻中,编码HDM家族的OsJMJ706成员通过对组蛋白H3赖氨酸9(H3K9)的二甲基和三甲基的去甲基化作用,参与调节水稻花器官的发育,影响其外壳开放性[24]。系统进化分析显示,番茄中的Solyc08g076490Solyc08g0005240OsJMJ706高度同源。此外,Solyc08g076490Solyc08g0005240在不同番茄品种花组织中的表达水平均较高,这暗示着二者也极有可能参与番茄花器官的发育。编码HMT家族的Solyc04g057880Solyc06g059960均在果实发育期高表达,且系统进化分析显示二者与拟南芥AtSDG8亲缘关系最近,而研究表明AtSDG8可通过调节CRTISO(胡萝卜素异构酶)上的H3K4三/二甲基化来影响拟南芥中类胡萝卜素的生物合成[25]。类胡萝卜素作为番茄果实重要的组成成分,推测Solyc04g057880Solyc06g059960也可能参与了番茄果实中类胡萝卜素的生物合成,但这些基因的具体功能及分子调控机制有待进一步验证。

4 结论

本研究共鉴定出148个番茄HM基因(32个HAT、11个HDAC、50个HMT和55个HDM),不均匀地分布在12条染色体上。不同基因其结构差异较大,均包含多种功能结构域。番茄HM与拟南芥和水稻的同源关系较远,且在植物不同生长发育阶段及不同组织中均有一定的表达,暗示其可能参与了番茄多种生长发育过程。其中,部分基因在特定的组织中高表达,有望进一步开展分子研究验证其功能,为番茄遗传改良奠定基础。

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(责任编辑     马春敏)