广东农业科学  2021, Vol. 48 Issue (5): 50-56   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2021.05.007.
0

文章信息

引用本文
赖思婷, 丰锋, 陈桦洁, 廖菲, 唐芸妃, 黄朝凤, 陈江萍, 吴日怡. 6-BA对火凤凰蝴蝶兰成花诱导的影响[J]. 广东农业科学, 2021, 48(5): 50-56.   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2021.05.007
LAI Siting, FENG Feng, CHEN Huajie, LIAO Fei, TANG Yunfei, HUANG Chaofeng, CHEN Jiangping, WU Riyi. Effect of 6-BA on Flowering Induction of 'Huofenghuang'Butterfly Orchid[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2021, 48(5): 50-56.   DOI: 10.16768/j.issn.1004-874X.2021.05.007

基金项目

教育部卓越农林人才培养计划项目(GDOU2014041204);国家级大学生实践教学基地——农科教合作人才培养基地建设专项(GDOU2013040301);国家级大学生创新创业项目(CXXL2018010、CXXL2020063)

作者简介

赖思婷(1997—),女,在读硕士生,研究方向为园艺产品采后科学,E-mail:493584134@qq.com.

通讯作者

丰锋(1969—),男,硕士,教授,研究方向为组培快繁及安全高效生产技术,E-mail:ff1703@126.com.

文章历史

收稿日期:2020-12-08
6-BA对火凤凰蝴蝶兰成花诱导的影响
赖思婷 , 丰锋 , 陈桦洁 , 廖菲 , 唐芸妃 , 黄朝凤 , 陈江萍 , 吴日怡     
广东海洋大学滨海农业学院,广东 湛江 524088
摘要:【目的】 采用6-BA处理蝴蝶兰,研究6-BA对蝴蝶兰催花的影响,为蝴蝶兰花期调控提供依据,同时为不易催花品种的成花诱导提供参考。【方法】 以火凤凰蝴蝶兰成苗为试验材料,在人工空调催花条件下,采用单因素随机区组试验设计,设置6-BA 0(CK)、5、10、15、20、25、30 mg/L等6个浓度,每隔10 d进行喷施处理,喷施部位为蝴蝶兰自上向下第2、3、4叶片节部位,期间测定蝴蝶兰叶片的可溶性糖、可溶性蛋白质含量以及CAT、POD活性,调查抽梗率、双梗率、花梗长度、处理到抽梗天数、花朵直径和花蕾数等指标。【结果】 25 mg/L 6-BA处理蝴蝶兰后30 d抽梗率为80.00%,清水对照植株抽梗率仅11.76%,10~30 mg/L 6-BA处理后40 d抽梗率超过90.00%、处理后50 d全部抽梗;25~30 mg/L 6-BA处理到抽梗天数为29 d,显著低于清水处理的44 d。花芽未抽出时,蝴蝶兰叶片可溶性蛋白质含量最低、可溶性糖含量最高;花芽抽出时,蝴蝶兰叶片CAT、POD活性逐渐下降。【结论】 6-BA喷施处理蝴蝶兰的最适宜浓度是25 mg/L,在较短时间内抽梗率达到最高,为低温替代提供了参考依据。
关键词蝴蝶兰    6-BA    花芽分化    生理生化    
Effect of 6-BA on Flowering Induction of 'Huofenghuang'Butterfly Orchid
LAI Siting , FENG Feng , CHEN Huajie , LIAO Fei , TANG Yunfei , HUANG Chaofeng , CHEN Jiangping , WU Riyi     
College of Coastal Agriculture Sciences, Guangdong Ocean University, Zhanjiang 524088, China
Abstract: 【Objective】 The effect of 6-BA on the flower forcing of butterfly orchid with a view to provide a basis for the regulation of flowering time of butterfly orchid, and to provide a reference for the flowering induction of varieties that are not easy to be induced. 【Method】 With'Huofenghuang'butterfly orchid seedlings as test materials, by artificial forcing under the condition of air conditioning, single factor randomized block design was adopted and six 6-BA concentrations including 0(CK), 5, 10, 15, 20, 25 and 30 mg/L were set up. The 6-BA was sprayed every 10 days, and the spraying position for the butterfly orchid was the 2nd, 3rd and 4th blade section area(from top to bottom). During the spraying period, the soluble sugar, soluble protein, CAT and POD activity of butterfly orchid leaf were determine, and the indexes such as pedicel extraction rate, double pedicel rate, pedicel length, days from treatment to pedicel extraction flower diameter and flower bud number were investigated. 【Result】 After being treated with 25 mg/L 6-BA for 30 d, the pedicel extraction, rate of butterfly orchid was 80.00%, while that of water control was only 11.76%. After being treated with 10-30 mg/L 6-BA for 40 d, the pedicel extraction rate of butterfly orchid was more than 90.00%, and all the pedicels were extracted after being treated for 50 d. The time from 25-30 mg/L 6-BA treatment to pedicel extraction was 29 days, which was significantly lower than that of water treatment(44 days). In accordance with the morphological observation, the soluble protein content in the butterfly orchid leaves was the lowest and the soluble sugar content in the leaves was the highest before the flower buds were extracted. The CAT activity and POD activity of butterfly orchid leaf gradually decreased at the time of flower bud extraction. 【Conclusion】 The optimal concentration of 6-BA for butterfly orchid was 25 mg/L and the pedicle extraction rate reached the highest in a short period of time, which provided a reference basis for low temperature replacement.
Key words: butterfly orchid    6-BA    flower bud differentiation    physiological and biochemical    

【研究意义】蝴蝶兰(Phalaenopsis spp.)为兰科(Orchidaceae)蝴蝶兰属多年生草本植物,世界著名的珍贵花卉之一。蝴蝶兰以其美丽多姿、花朵造型独特深受各国人们喜爱,被誉为“洋兰皇后”[1]。蝴蝶兰在热带地区气候条件下自然花期为每年3~5月,为促进蝴蝶兰的开发利用,增大节假日对蝴蝶兰的需求量,尤其是春节等重要节假日用花,可通过人工调节和控制环境因子进行花期调控,实现按时按需供花[2]。蝴蝶兰花期调控一般采用高山低温以及空调制冷方法,但高山基地存在气候波动不稳定、上下山运输成本逐年增高等问题,因此,目前越来越多的从业者采用空调结合植物生长调节剂的方法进行催花[3]。【前人研究进展】金龙等[4]采用6-BA喷施蝴蝶兰叶片自上向下第2、3、4叶片节部位,结果表明大辣椒蝴蝶兰对植物生长调节剂较富乐夕阳敏感,促进其花芽分化的6-BA质量浓度为10、25 mg/L。刘晓荣等[5]采用6-BA喷施大花型线条花系2048蝴蝶兰植株叶片自上向下第2、3、4叶片节部位的方法,结果发现10、25、50 mg/L 6-BA提高了蝴蝶兰抽梗率、双梗率和开花率,以25 mg/L为最佳浓度。陈凤玲等[6]在蝴蝶兰花芽分化前用GA3涂抹涂抹茎基部,结果表明150~200 mg/L处理可提前开花12~15 d;但小花的畸形率随着GA3质量浓度的提高也随之上升,加入等量IBA或IAA可减少花畸形的发生。国内学者研究使用6-BA和GA3灌根处理对春石斛花芽分化影响时发现,GA3灌根处理也可促进假鳞茎花芽发育,但效果不稳定。施用GA3时,质量浓度不宜超过20 mg/L,高浓度GA3会导致春石斛叶片脱落;使用6-BA灌根处理具有促进春石斛的花芽分化的作用[7-9]。陈昌铭[10]采用不同喷施方式发现,在杂交兰苗期促进花芽分化上,以低浓度6-BA喷施假鳞茎为佳;在促进花梗长度上,以低浓度GA3喷施叶面为宜。在植物生长调节剂其他处理方式和处理部位的研究方面,贵红霞[11]采用1% 6-BA涂抹兰花根系发现,该方式可促进产生不定芽进而萌发增加分枝;采用1% 6-BA涂抹秋海棠叶片,可使叶边产生不定芽,进而萌发形成新株茎枝。【本研究切入点】本试验采用不同质量浓度6-BA喷施处理火凤凰蝴蝶兰成苗,喷施后50 d内每隔10~15 d测定蝴蝶兰叶片可溶性糖、可溶性蛋白质含量以及POD、CAT活性等生理指标,且在抽出花梗后计算各处理抽梗率和双梗率,在抽出花蕾后测定形态指标,分析生理指标在不同6-BA浓度喷施处理下的变化,同时分析这些生理指标变化与形态指标的关联性。目前有关6-BA喷施处理对蝴蝶兰成花诱导影响的研究较多,而对火凤凰蝴蝶兰研究较少,同时也针对6-BA促进蝴蝶兰花芽分化的浓度因种类不同也会产生差异,本文以此为切入点,探讨6-BA喷施处理火凤凰蝴蝶兰成花诱导影响的同时找出促进花芽分化效果最适宜的喷施浓度,进一步研究和验证6-BA对于蝴蝶兰成花诱导作用。【拟解决的关键问题】分析火凤凰蝴蝶兰生理指标与形态指标之间的关联性,探讨6-BA对火凤凰蝴蝶兰成花诱导的影响,为蝴蝶兰催花措施的制定提供技术支撑。

1 材料与方法 1.1 试验材料

供试蝴蝶兰品种为火凤凰,成苗,购于佛山市顺德区陈村花卉世界。

1.2 试验方法

采用单因素随机区组试验设计,在人工空调控温条件下喷施6-BA,控温条件为日温20℃、夜温17 ℃,光照培养架培养(放置盆栽成苗火凤凰蝴蝶兰)。6-BA质量浓度设5、10、15、20、25、30 mg/L共6个处理,以喷施清水为对照。每个处理18株,共126株。6-BA采用小喷壶喷施,喷施部位为自上向下第2、3、4叶片节部位,避免喷施到新叶导致伤害。花卉运回实验室后用清水灌溉缓苗,2019年7月28日(缓苗4 d后蝴蝶兰状态良好,均是未抽梗、生长情况一致的蝴蝶兰)进行6-BA第1次喷施处理,然后分别在第1次处理后10、20 d进行第2、第3次处理,共喷施3次。各处理温度、光照、肥水用量等其他裁培管理措施一致。每株蝴蝶兰每隔10 d浇入100 mL花宝2号(N∶P∶K=20∶20∶20)1 000倍+ 磷酸氢二钾(K2HPO4)500倍混合液。

1.3 测定项目及方法

试验开始后,每隔10 d调查1次抽梗率,至80 d结束调查。

在蝴蝶兰植株抽出花梗后计算抽梗率和双梗率,在蝴蝶兰植株抽出花蕾之后测定花梗长度、处理到抽梗的时间间隔、花径、花蕾数量。

试验后每隔10~15 d取样1次,每次测定随机取样每个处理2株,剪取植株自上而下第2片叶,用以测定生理指标,结束测定时间为试验后50 d(此时绝大多数植株已经抽梗)。其中,可溶性糖含量采用蒽酮比色法[12]测定;可溶性蛋白质含量采用考马斯亮蓝法[13]测定;CAT活性的测定参考Torres等(2003)的方法稍做改动;POD活性的测定参考Polle等(1994)的愈创木酚法并加以改进。

试验数据的处理分析采用SPSS 19.0,采用Duncan多重比较法进行方差分析、采用SPSS和Excel 2010进行数据统计分析。

2 结果与分析 2.1 6-BA对火凤凰蝴蝶兰形态指标的影响

表 1可知,25 mg/L 6-BA处理后30 d,蝴蝶兰植株抽梗率为80%,高于清水对照植株的抽梗率11.76% 及5 mg/L 6-BA处理植株的抽梗率5.88%;每个6-BA浓度处理后30~60 d,植株抽梗率稳步增长;10~30 mg/L 6-BA处理后60 d,植株均100% 抽梗;清水对照植株在70 d全部抽梗;而5 mg/L 6-BA处理植株抽梗速度最慢,在处理后80 d才达到100% 抽梗;30 mg/L 6-BA处理植株双梗率达到17.65%。推测10~30 mg/L 6-BA喷施处理能显著加快火凤凰蝴蝶兰花芽分化速度。

表 1 6-BA对火凤凰蝴蝶兰抽梗率的影响 Table 1 Effect of 6-BA on pedicel extraction rate of'Huofenghuang'butterfly orchid

表 2可知,10 mg/L 6-BA处理植株的花梗长度为46.33 cm,显著高于15 mg/L 6-BA处理植株的花梗长度40.61 cm,其他处理间无显著差异。10~30 mg/L 6-BA处理植株在29~32 d抽出花梗,显著低于清水处理植株的44.47 d和5 mg/L 6-BA处理植株的47.41 d。不同6-BA喷施处理植株花朵直径没有显著差异,集中在11 cm左右。不同6-BA处理下,植株花蕾数没有显著差异,集中在5朵左右。推测6-BA处理对于火凤凰蝴蝶兰的花梗长度、花朵直径、花蕾数目没有显著影响。

表 2 6-BA对火凤凰蝴蝶兰形态指标的影响 Table 2 Effect of 6-BA on morphology index of'Huofenghuang'butterfly orchid

2.2 6-BA对火凤凰蝴蝶兰叶片可溶性糖含量的影响

表 3可知,20、25 mg/L 6-BA喷施处理后30 d植株叶片可溶性糖含量达到最大值(21.27、19.93 mg/g),显著高于其他处理;喷施处理后30 d植株进行抽梗,消耗大量可溶性糖,因此呈现下降趋势。5~15 mg/L、30 mg/L 6-BA处理植株叶片可溶性糖含量在处理后40 d达最大,喷施处理后40 d植株进行抽梗。无论是在喷施处理后30 d还是40 d可溶性糖含量达到最大值,这都与形态观察结果一致,这时有花芽出现,推测在蝴蝶兰抽梗之前叶片积累大量可溶性糖,因此蝴蝶兰叶片中的可溶性糖含量呈现上升趋势;随着花芽发生、发育和花梗抽生,蝴蝶兰抽梗之后可溶性糖大量输出到花梗中,因此叶片可溶性糖含量在蝴蝶兰抽梗之后呈现下降趋势。从可溶性糖含量的变化可以看出,喷施处理后30 d,20、25 mg/L 6-BA处理的植株叶片可溶性糖含量高于其他处理,而这两个处理的抽梗率也最高,分别达77.78% 和80%。由此推测,在抽出花梗时期蝴蝶兰叶片较高的可溶性糖可能会提高蝴蝶兰抽梗率。

表 3 6-BA对火凤凰蝴蝶兰叶片可溶性糖含量的影响 Table 3 Effect of 6-BA on soluble sugar content in'Huofenghuang'butterfly orchid leaves

2.3 6-BA对火凤凰蝴蝶兰叶片可溶性蛋白质含量的影响

表 4可知,25~30 mg/L 6-BA处理蝴蝶兰植株叶片可溶性蛋白质含量在喷施处理后30 d大幅下降,其余处理植株叶片可溶性蛋白质含量在处理后40 d降到最小值,这与形态观察结果一致,这时各处理有花芽出现,推测可能是叶片为花芽分化做物质准备而消耗大量可溶性蛋白质;喷施处理后50 d,所有处理可溶性蛋白质含量又趋于上升,在蝴蝶兰抽梗后做好营养物质供应保证。从可溶性蛋白质含量的变化可以看出,在喷施处理后30 d,清水对照、5 mg/L 6-BA处理植株叶片可溶性蛋白质含量高于其他处理,而这两个处理的抽梗率也是最低的(分别是11.76%、5.88%)。推测在抽出花梗时期蝴蝶兰叶片较高的可溶性蛋白质可能会降低蝴蝶兰的抽梗率。

表 4 6-BA对火凤凰蝴蝶兰叶片可溶性蛋白质含量的影响 Table 4 Effect of 6-BA on soluble protein content in'Huofenghuang'butterfly orchid leaves

2.4 6-BA对火凤凰蝴蝶兰叶片CAT活性的影响

表 5可知,在各处理蝴蝶兰抽梗之前的30 d植株叶片CAT活性都呈现上升趋势,这与形态观察结果一致,这时有花芽还未出现,CAT活性的上升是为抽出花梗做准备,在喷施处理后30~40 d,清水对照、5 mg/L 6-BA处理植株叶片的CAT活性呈现上升趋势,可能是因为这两个处理抽出花梗较慢、在为抽出花梗做准备,所以植株叶片CAT活性一直维持在上升趋势;蝴蝶兰抽梗后30~40 d,10~30 mg/L 6-BA处理植株叶片CAT活性呈现下降趋势,这与形态观察结果一致,这时有花芽出现,植株体内氧自由基减少,有利于蝴蝶兰花芽分化,进行抽梗;推测蝴蝶兰叶片CAT活性较低时,有利于花梗抽出。从CAT活性变化可以看出,喷施处理后30 d,20~30 mg/L 6-BA处理植株叶片CAT活性高于其他处理,而这3个处理抽梗率最高,分别为77.78%、80%、76.47%;推测在抽出花梗时期蝴蝶兰叶片较高CAT活性可能会提高蝴蝶兰的抽梗率。

表 5 6-BA对火凤凰蝴蝶兰叶片CAT活性的影响 Table 5 Effect of 6-BA on CAT activity in Phalaenopsis amabilis leaves

2.5 6-BA对火凤凰蝴蝶兰叶片POD活性的影响

表 6可知,各处理蝴蝶兰植株叶片在整个过程中POD活性均有一定差异,但不同处理间差异未达显著水平。在喷施处理后的15~30 d,除清水对照、5 mg/L 6-BA处理植株叶片POD活性变化较平缓外,其他处理蝴蝶兰叶片POD活性均处于上升趋势,这与形态观察结果一致,此时有些花芽未出现,仍处于营养积累阶段,为抽梗做准备。喷施处理后30~50 d,蝴蝶兰叶片POD活性呈现两种变化:第一种是上升- 下降,表明蝴蝶兰处于营养继续积累阶段,植株叶片POD活性下降的过程就是花梗抽出(处理后40 d)的过程;第二种是下降- 上升,花梗抽出(处理后30 d)的过程中,POD活性下降,之后上升,是蝴蝶兰抽出花梗后进入缓慢生长的阶段,即叶片POD活性处于上升阶段。总之,叶片较低POD活性有利于花梗抽出,当进行比较缓慢的营养生长阶段时叶片POD活性较高。对30 mg/L 6-BA处理蝴蝶兰叶片POD活性一直处于上升过程的原因,目前尚不清楚,需要进一步深入研究。从蝴蝶兰叶片POD活性的变化可以看出,喷施处理后30 d,清水对照、5 mg/L 6-BA处理植株POD活性低于其他处理,而这两个处理的抽梗率也最低(11.76%、5.88%),推测在抽出花梗时期蝴蝶兰叶片较低的POD活性可能会降低其抽梗率。

表 6 6-BA对火凤凰蝴蝶兰叶片POD活性的影响 Table 6 Effect of 6-BA on POD activity in Phalaenopsis amabilis leaves

3 讨论

本试验结果表明,用25 mg/L 6-BA处理火凤凰蝴蝶兰后30 d,抽梗率高达80.00%,而清水对照植株药后30 d的抽梗率仅为11.76%,这与金龙等“10 mg/L 6-BA处理大辣椒蝴蝶兰能显著增加花芽分化速度、促进花芽分化”的结论[4]有差别。由于蝴蝶兰品种不同,生长特性及内源激素变化也不同,导致不同浓度6-BA促进蝴蝶兰花芽分化的程度可能存在差异,这方面还要扩大品种范围进一步试验。我们发现,不同质量浓度6-BA处理火凤凰蝴蝶兰,植株花梗长度、花朵直径、花蕾数无明显差异,这与黄建等“一定浓度6-BA处理能在一定程度上增加蝴蝶兰的花蕾数”的结论[14]不一致,而与吕秉韬等提出的“不同浓度6-BA处理对不同品种的蝴蝶兰花朵数和花朵直径有不同的效果”[15]大致相同。在本试验中,10~20 mg/L 6-BA处理植株的双梗率均为5.56%,30 mg/L 6-BA处理植株双梗率为17.65%。关于蝴蝶兰双梗率是否随着6-BA质量浓度增大而提高,还需要进一步试验探讨,针对李奥等[16]提出的“不同浓度6-BA明显提高了供试3个品种蝴蝶兰的双梗率,其中金桔和双霞的最适处理浓度为100 mg/L,而‘富乐夕阳’的最适浓度为200 mg/L”的结论,还需进一步进行质量浓度的筛选。关于在人工空调培养的同时喷施6-BA,低温和6-BA这两个因素是哪个因素促进了蝴蝶兰表型和生理指标的变化这个问题,我们在实验方案过程中设置了在同等条件的人工空调培养的蝴蝶兰植株作为对照,因此可以确定蝴蝶兰表型和生理指标发生改变是由喷施6-BA所致。

生理指标测定方面,我们推测在蝴蝶兰抽梗之前叶片积累大量可溶性糖,这与黄胜琴等[17]在低温条件下对蝴蝶兰进行花芽诱导所得出的结论相一致。火凤凰蝴蝶兰抽出花梗时,叶片为花芽分化做物质准备而消耗了大量可溶性蛋白质,说明花芽分化消耗了一定量的可溶性蛋白质,这与彭芳等“花器官分化开始前,花芽中可溶性蛋白质含量先逐渐下降,之后再逐渐增加并达到最高水平(花萼原基分化期),这可能是花芽萌出前,一些蛋白质水解酶活性增强,使组合蛋白分解成可溶性蛋白质,或形成特异结构和功能蛋白以满足花芽的形态建成”的结论[18]相一致。

同时,我们发现喷施6-BA处理后40 d、50 d,各处理蝴蝶兰植株的生理指标都显示出恢复到差异不显著阶段以及各指标之间差距减小的状态,这可能与蝴蝶兰最后测定的形态指标(如花梗长度、花朵直径、花蕾数)差异不显著有一定关系。针对30 mg/L 6-BA处理植株的双梗率达到最大,还需进一步深入研究生理指标与双梗率之间的关系。本研究仅对较易催花的蝴蝶兰品种火凤凰进行了试验研究,为其他品种蝴蝶兰的催花提供了参考。

4 结论

25 mg/L 6-BA喷施处理火凤凰蝴蝶兰后30 d,抽梗率为80.00%,清水处理抽梗率仅为11.76%,10~30 mg/L 6-BA喷施处理蝴蝶兰后40 d抽梗率超过90.00%,喷施处理50 d后全部抽梗;25~30 mg/L 6-BA处理到抽梗天数为29 d,显著低于清水对照的44 d。与形态观察相一致的是,花芽未抽出时(即蝴蝶兰抽梗前)叶片可溶性蛋白质含量最低、可溶性糖含量最高;花芽抽出时,蝴蝶兰叶片CAT、POD活性逐渐下降。推测在抽出花梗时期,蝴蝶兰叶片较高的可溶性糖含量、CAT活性会提高抽梗率;抽出花梗时期,蝴蝶兰较高的可溶性蛋白质含量、较低的POD活性会降低抽梗率;抽出花梗后,各生理指标差异不显著以及差异减少导致各处理间花梗长度、花朵直径、花蕾数差异不显著。

参考文献(References):
[1]
罗金环, 羊金殿, 张孟锦, 邢增俊, 袁必局, 符洁. 植物生长调节剂在蝴蝶兰花期调控中的应用研究现状[J]. 现代园艺, 2014(21): 6-7. DOI:10.14051/j.cnki.xdyy.2014.21.003
LUO J H, YANG J D, ZHANG M J, XING ZENG J, YUAN B J, FU J. Research status of application of plant growth regulators in flowering regulation of Phalaenopsis[J]. Modern Horticulture, 2014(21): 6-7. DOI:10.14051/j.cnki.xdyy.2014.21.003
[2]
张孟锦, 罗金环, 羊金殿, 符洁, 袁必局, 李香. 热带地区蝴蝶兰花期调控技术总结[J]. 热带林业, 2020, 48(2): 53-55. DOI:10.3969/j.issn.1672-0938.2020.02.013
ZHANG M J, LUO J H, YANG J D, FU J, YUAN B J, LI X. A summary of techniques for regulating the flowering period of Phalaenopsis in tropical areas[J]. Journal of Tropical Forestry, 2020, 48(2): 53-55. DOI:10.3969/j.issn.1672-0938.2020.02.013
[3]
杨志娟, 张孟锦. 蝴蝶兰花期调控技术[J]. 农业工程技术, 2012(7): 62-63. DOI:10.16815/j.cnki.11-5436/S.2012.07.007
YANG Z J, ZHANG M J. Technology of Controlling flowering time of Phalaenopsis[J]. Agricultural Engineering Technology, 2012(7): 62-63. DOI:10.16815/j.cnki.11-5436/S.2012.07.007
[4]
金龙. 宁夏地区蝴蝶兰日光温室催花与生长控制技术研究[D]. 银川: 宁夏大学, 2015. DOI: 10.7666/d.Y2860564.
JIN L. Research on flower accelerating and growth control technology of butterfly orchid solar greenhouse in Ningxia region[D]. Yinchuan: Ningxia University, 2015. DOI: 10.7666/d.Y2860564.
[5]
刘晓荣, 王碧青, 朱根发, 程智慧. 植物生长调节剂对蝴蝶兰花芽分化与发育的影响[J]. 广东农业科学, 2009(11): 54-57. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2009.11.045
LIU X R, WANG B Q, ZHU G F, CHENG Z H. Effects of plant growth regulators bud differentiation and development of Phalaenopsis[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2009(11): 54-57. DOI:10.16768/j.issn.1004-874X.2009.11.045
[6]
陈凤玲, 汤久顺, 何小弟, 俞莉莉. 蝴蝶兰花期调控技术中的外源激素应用[J]. 天津农业科学, 2012, 18(3): 110-112. DOI:10.3969/j.issn.1006-6500.2012.03.026
CHEN F L, TANG J S, HE X D, YU L L. Application of exogenous hormones in the regulation of flowering time of Phalaenopsis[J]. Tianjin Agricultural Science, 2012, 18(3): 110-112. DOI:10.3969/j.issn.1006-6500.2012.03.026
[7]
李振坚, 王雁, 彭镇华, 王彩云, 缪崑, 于耀. 6-BA、GA3调控春石斛花芽分化的效应[J]. 亚热带植物科学, 2009, 38(1): 15-18. DOI:10.3969/j.issn.1009-7791.2009.01.004
LI Z J, WANG Y, PENG Z H, WANG C Y, MIAO K, YU Y. Effects of 6-BA and GA3 on flower bud differentiation of Dendrobium officinale[J]. Subtropical Plant Science, 2009, 38(1): 15-18. DOI:10.3969/j.issn.1009-7791.2009.01.004
[8]
钱桦, 刘燕, 郑勇平, 俞继英, 范文锋. 施用6-BA对春石斛花芽分化及内源激素的影响[J]. 北京林业大学学报, 2009, 31(6): 27. DOI:10.13332/j.1000-1522.2009.06.009
QIAN H, LIU Y, ZHENG Y P, YU J Y, FAN W F. Effects of application of 6 -BA on bud differentiation and endogenous hormones of Dendrobium officinale[J]. Journal of Beijing Forestry University, 2009, 31(6): 27. DOI:10.13332/j.1000-1522.2009.06.009
[9]
王再花, 朱根发, 欧孟昌, 王碧青. 植物生长调节剂促进春石斛提前开花效果研究[J]. 广东农业科学, 2008(10): 37-39. DOI:10.3969/j.issn.1004-874X.2008.10.013
WANG Z H, ZHU G F, OU M C, WANG B Q. Effect of plant growth regulator on early flowering of Dendrobium[J]. Guangdong Agricultural Sciences, 2008(10): 37-39. DOI:10.3969/j.issn.1004-874X.2008.10.013
[10]
陈昌铭. 不同植物生长调节剂对杂交兰生长的影响[J]. 安徽农业科学, 2018, 46(10): 97-99, 117. DOI:10.3969/j.issn.0517-6611.2018.10.028
CHEN C M. YE S H. With the influence of plant growth regulator on hybrid orchid growth[J]. Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2018, 46(10): 97-99, 117. DOI:10.3969/j.issn.0517-6611.2018.10.028
[11]
贵红霞. 浅谈植物生长调节剂在花卉繁育中的应用[J]. 现代园艺, 2018(11): 87-88. DOI:10.14051/j.cnki.xdyy.2018.11.049
GUI H X. Discussion on the application of plant growth regulator in flower breeding[J]. Modern Horticulture, 2018(11): 87-88. DOI:10.14051/j.cnki.xdyy.2018.11.049
[12]
张志良, 瞿伟菁. 植物生理实验指导[M]. 第3版. 北京: 高等教育出版社, 2003.
ZHANG Z L, ZHAI W Q. Experimental guidance of plant physiology[M]. 3rd Edition. Beijing: Higher Education Press, 2003.
[13]
叶尚红. 植物生理生化实验教程[M]. 昆明: 云南科技出版社, 2004.
YE S H. Plant physiology and biochemistry experiment course[M]. Kunming: Yunnan Science and Technology Press, 2004.
[14]
黄建, 钱仁卷, 张旭乐, 林霞, 张庆良, 杨宁生. 不同激素处理对蝴蝶兰开花的影响[J]. 浙江农业科学, 2009(3): 493-494, 499. DOI:10.3969/j.issn.0528-9017.2009.03.021
HUANG J, QIAN R J, ZHANG X L, LIN X, ZHANG Q L, YANG N S. Effects of different hormone treatments on flowering of Phalaenopsis[J]. Zhejiang Agricultural Sciences, 2009(3): 493-494, 499. DOI:10.3969/j.issn.0528-9017.2009.03.021
[15]
吕秉韬, 吴静雪, 马关喜, 金蓉, 孙德利, 胡卫珍, 陈利萍, 齐振宇. 6-BA对不同品种蝴蝶兰开花性状的影响[J]. 浙江农业科学, 2020, 61(6): 1115-1118. DOI:10.16178/j.iss.0528-9017.20200624
LYU B T, WU J X, MA G X, JIN R, SUN D L, HU W Z, CHEN L P, QI Z Y. Effects of 6-BA on flowering characters of different Phalaenopsis[J]. Zhejiang Agriculture Sciences, 2020, 61(6): 1115-1118. DOI:10.16178/j.iss.0528-9017.20200624
[16]
李奥, 宫子惠, 张英杰, 张京伟, 孙纪霞, 刘学庆. 外源激素对蝴蝶兰双梗率及花梗发育的影响[J]. 分子植物育种, 2020, 17(4): 1313-1318. DOI:10.13271/j.mpb.018.001313
LI A, GONG Z H, ZHANG Y J, ZHANG J W, SUN J X, LIU X Q. Exogenous hormones on butterfly orchid double infarction rate and the influence of the pedicel development[J]. Journal of Molecular Plant Breeding, 2020, 17(4): 1313-1318. DOI:10.13271/j.mpb.018.001313
[17]
黄胜琴, 李永涛, 吕翠婷, 雷洪波, 叶庆生. 蝴蝶兰花芽诱导过程中碳水化合物在叶与腋芽中的分配变化[J]. 园艺学报, 2007(6): 1515-1519. DOI:10.16420/j.issn.0513-353x.2007.06.026
HUANG S Q, LI Y T, LYU C T, LEI H B, YE Q S. Changes of carbohydrate distribution in leaves and axillary buds during bud induction of Phalaenopsis[J]. Acta Horticulturae Sinica, 2007(6): 1515-1519. DOI:10.16420/j.issn.0513-353x.2007.06.026
[18]
彭芳, 田敏, 王彩霞, 韦鹏霄. 文心兰花芽分化过程中糖类和蛋白质的组织化学定位[J]. 亚热带植物科学, 2011, 40(4): 8-11. DOI:10.3969/j.issn.1009-7791.2011.04.002
PENG F, TIAN M, WANG C X, WEI P X. Histochemical localization of carbohydrate and protein during bud differentiation of Oncidium[J]. Subtropical Plant Science, 2011, 40(4): 8-11. DOI:10.3969/j.issn.1009-7791.2011.04.002
(责任编辑  张辉玲)